导读:本文包含了查尔酮合成酶论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:基因,花青,信息学,花青素,生物,多态性,石竹。
查尔酮合成酶论文文献综述
原晓龙,李云琴,王毅[1]（2019）在《滇牡丹中3个类查尔酮合成酶基因的克隆与表达》一文中研究指出从开黄花的滇牡丹转录组中分离了3个CHS基因,利用生物信息学预测其基因功能,并比较不同花发育时期CHS基因的表达量。结果显示:3个CHS基因的cDNA全长分别为1 173、1 185、1 128 bp,依次命名为PdCHS1(GenBank登录号MK516264)、PdCHS2(GenBank登录号MK516265)和PdCHS3(GenBank登录号MK516266),分别编码390、394和375个氨基酸;这3个CHS基因编码的蛋白均为无信号肽的非分泌蛋白,均含查尔酮合成酶活性位点基序(G/A) FGPG。聚类结果显示,滇牡丹中的3个CHS蛋白归属于不同分支。基因表达结果显示,PdCHS1基因在花蕾期和花蕊中表达量较高,PdCHS2基因在末花期和初花期表达量较高,PdCHS3基因在末花期和花蕾期表达量较高。这3个CHS基因分别参与不同次生代谢产物的合成,推测PdCHS1参与柚皮素查尔酮,PdCHS2参与芪类化合物,PdCHS3参与聚酮类化合物的生物合成。(本文来源于《浙江农业学报》期刊2019年09期）
郑涵予,袁元,金河延,于洋,全雪丽[2]（2019）在《膜荚黄芪查尔酮合成酶基因的克隆与表达分析》一文中研究指出查尔酮合成酶(Chalcone synthase,CHS)是生物合成黄酮类的关键酶和限速酶。该研究从膜荚黄芪中克隆了1个CHS基因,Genbank登陆号为KY086285(AmCHS)。AmCHS全长cDNA为1 473 bp,开放阅读框为1 170 bp,编码389个氨基酸,其分子量为42 828.51 Da,等电点为6.05。生物信息学分析表明:AmCHS蛋白与其它植物CHS同源,无信号肽,定位于细胞质。实时荧光定量PCR和高效液相色谱分析结果显示:AmCHS在根、茎、叶中的表达水平与异黄酮的积累变化一致,证明了AmCHS的表达与膜荚黄芪异黄酮的积累密切相关。(本文来源于《延边大学农学学报》期刊2019年02期）
梁先利,张丽清,柯丽萍,孙玉强[3]（2019）在《彩色棉查尔酮合成酶基因GhCHS1的克隆和功能分析》一文中研究指出查尔酮合成酶基因(chalcone synthase, CHS)是黄酮类生物合成途径中的第1个限速酶基因。为探讨彩色棉(Gossypium hirsutum)花青素通路中关键酶基因GhCHS与彩色纤维色泽形成的关系,本研究克隆了GhCHS1基因,采用病毒介导基因干涉(virus induced gene silencing, VIGS)技术,获得彩色棉棕絮1号GhCHS1干涉株系,使用qRT-PCR分析干涉株系不同发育时期纤维的GhCHS1基因表达水平,测定干涉株系的纤维、叶片及棉仁花青素含量。从已知棉属基因组筛选到CHS家族的24个成员,根据同源性可归属7个类型和6种叁级空间结构类型,其中GhCHS1 (GenBank No. LOC107897841)在棕絮1号发育的纤维和叶片中优势表达。GhCHS1蛋白主要分布在胞液中,二级结构以无规卷曲和α螺旋为主。棕絮1号GhCHS1干涉株系不同发育时期纤维中GhCHS1基因表达水平显着降低(P<0.05),纤维色泽显着淡化变白,明显区别于野生型棕色纤维,GhCHS1基因的表达水平越低,纤维色泽越浅。花青素含量分析表明,纤维种皮和棉仁花青素含量越少纤维色泽越浅。该研究结果表明GhCHS1基因参与彩色棉植株体内和纤维中花青素的合成和累积,GhCHS1基因在纤维色泽形成中起着关键作用。本研究为开展彩色棉纤维色泽形成机理的研究提供了一定的理论基础。(本文来源于《农业生物技术学报》期刊2019年06期）
王志彬[4]（2019）在《柑橘查尔酮合成酶基因遗传多样性及其功能研究》一文中研究指出柑橘植物的根、茎、叶、花、果实以及种子中富含多种类黄酮类次生代谢产物,对人类具有重要的保健功能。目前对柑橘类黄酮生物合成的遗传调控研究较少,对类黄酮生物合成量有明显影响的关键基因也鲜有报道。查尔酮合成酶CHS(Chalcone synthase)是类黄酮生物合成途径上游的关键酶,对类黄酮的产量有重要影响。本学位论文重点研究柑橘中CHS基因的遗传多样性及其对类黄酮产量的影响,鉴定了新的CHS功能基因,研究了其表达调控机制及对类黄酮生物合成的作用。利用UPLC检测了37份柑橘种质中的11种类黄酮成分,分析了其种类与含量在不同遗传背景下的分布特征;从10份类黄酮含量差异显着的种质中克隆了CitCHS2基因,研究了其遗传多样性及其表达与类黄酮含量的关系;利用同源序列比对从柑橘基因组数据库中检索到77条CHS相似序列,通过聚类分析筛选到10个CHS候选基因,通过对不同处理条件下各基因的表达模式进行研究,明确了CHS在柑橘中是家族基因及其主要功能成员,并发现了一个新的CHS基因。通过转基因实验,对2个功能成员影响类黄酮产量的作用进行了功能鉴定,对新的CHS基因进行了基因功能验证,基本明确了3个CHS基因对类黄酮生物合成的调控影响。获得的主要结果如下:1、柑橘类黄酮的时空分布UPLC分析结果显示,37份柑橘种质生理成熟期果皮中类黄酮的含量有较大的变化,种质间的总黄酮含量变化范围为1,918.51~17,037.80 mg﹒kg~(-1)鲜重,除金弹中总黄酮含量低于2,000 mg﹒kg~(-1)鲜重外,其余36份种质的总黄酮含量均超过3,000 mg﹒kg~(-1)鲜重,其中代代酸橙果皮中总黄酮含量最高,与金弹相比,两者相差近8倍。通过聚类分析可以清楚地看出,类黄酮含量有明显的种质特异性,特别是宽皮桔类和橙类等种质的聚类结果与遗传亲缘关系的分类结果基本一致。相同组织在不同的发育时期,总黄酮含量明显不同,而且不同种质间总黄酮含量的变化趋势差异显着;不同组织间的总黄酮含量也有非常大的差异,同一种质不同组织部位的类黄酮含量由高至低依次为幼果、嫩叶、幼茎、主茎和根,表现出显着的组织特异性。2、CitCHS2基因的遗传多样性从5份高类黄酮含量的种质(枳柚、巴西酸橙、塔罗科血橙、粉红汤姆逊葡萄柚和莽山大坑野桔),5份低类黄酮含量的种质(北京柠檬、宜昌橙、梁平柚、澳指檬杂柑和广西凭祥土柠檬)中,分别克隆了CitCHS2基因序列(GenBank Accession No.:KP720583~720592)。结果显示:CitCHS2基因的基本结构由一个内含子和两个外显子组成,内含子长度为102 bp,与cDNA序列比对发现其剪接位点不符合5'-GT…AG-3'的剪接方式,该内含子为非Ⅱ型剪接内含子,PolyA尾端起始于1385 bp处。CitCHS2基因的cDNA全长1313 bp,包含1,173 bp开放阅读框,编码391个氨基酸。10份种质的CitCHS2基因高度保守,共只在15个核苷酸位点上有差异并导致7个氨基酸位点(site 1~7)的改变。10份种质中的CHS蛋白均为疏水蛋白且均无跨膜结构域和信号肽,其分子量介于42,592.1~42,636.1 Da之间,等电点介于6.28~6.47之间,不稳定系数介于34.25~35.95之间。对来自10份柑橘种质的CHS的二级结构进行分析,发现有4个变异的氨基酸位点(site1(16~18 bp)、site2(442~444 bp)、site5(961~963 bp)和site7(1060~1062 bp))出现在α螺旋上,另外3个均不在任何结构域上。3、CitCHS2基因的表达及其对类黄酮含量的影响CitCHS2基因的表达具明显的组织特异性。检测了10份柑橘种质的叶片中CitCHS2基因的表达特征,除巴西酸橙外,其余种质幼嫩叶片中CitCHS2的表达水平显着高于成熟叶片。同一种质的不同组织中,CitCHS2基因的表达水平由高到低依次为幼果、嫩叶、幼茎、主茎韧皮部和根。北京柠檬、塔罗科血橙和广西凭祥土柠檬的果实在6个不同发育时期,CitCHS2基因的表达水平表现出先降低后变化趋势波动不明显。类黄酮含量的检测结果显示,CitCHS2基因的表达水平与类黄酮含量的变化趋势一致。同一种质嫩叶中的类黄酮含量高于成熟叶片。相关性分析显示,在成熟叶片中CitCHS2基因的表达与类黄酮含量之间的相关性较小(R<0.5),在嫩叶中两者表现出较明显的正相关关系(R=0.76)。除幼果外,在其它不同组织中CitCHS2基因的表达水平与类黄酮的含量之间具有一致性。北京柠檬、塔罗科血橙和广西凭祥土柠檬在6个不同的发育时期,其果皮中CitCHS2基因的表达与类黄酮含量之间表现出显着的相关性,相关系数分别为0.91,0.99和0.84。4、CHS基因家族成员的鉴定、表达分析及CitCHS3基因的鉴定从柑橘基因组数据库中通过同源序列比对筛选到77条CHS的相似序列进行聚类分析,除orange1.1t03054.1m外,其余76条CHS聚为叁类(I,II,III),注释分析表明第III类中的22条CHS基因为查尔酮合成酶基因,从中筛选了10条CHS作为候选基因,分别对甜橙幼苗进行MeJA、低温、高温、和黑暗处理,研究了CHS候选基因的活性及在不同处理条件下的表达模式。在MeJA诱导下,检测到了3个CHS基因的表达,分别是Ciclev10005133m(CitCHS1)、Ciclev10015535m(CitCHS2)和Ciclev10001405m,其中Ciclev10001405m是首次发现其为柑橘CHS基因家族的成员,命名为CitCHS3。叁个CHS中CitCHS1对MeJA的诱导响应最明显,CitCHS2和CitCHS3具有相似的表达模式,而且都在叶片、茎和子叶中表达。低温处理下,CitCHS1、CitCHS2和CitCHS3在叶片、子叶和根中均能响应低温诱导,但是在茎中,没有检测到CitCHS3的表达。CitCHS2能迅速响应低温诱导上调表达,且在所有组织中均有表达。高温处理条件下,CitCHS1的表达水平在不同的组织之间差异显着,最高的表达水平出现在根中,且高温处理4h表达水平最高,之后逐渐降低且仅有CitCHS1继续在根中表达。CitCHS2在叶片、茎和子叶中均有表达。CitCHS3在根中不表达,在叶片和子叶中虽能检测到表达但表达水平低。黑暗条件下,CitCHS1只在子叶中表达,在其余3个组织部位中不表达。CitCHS2在所有组织中均能检测到表达,但在子叶中其表达水平极低,该基因在不同组织上具有相似的表达模式,即黑暗条件下,该基因的表达水平均降低。CitCHS3在叶片、子叶和茎中有表达,在根中不表达,该基因在不同组织部位中的表达模式相似,表现为先升高后降低。相关性分析显示,3个CHS基因的总体表达水平与总类黄酮的含量之间存在正相关关系。对叁个基因的序列结构进行分析发现该叁个基因的结构非常保守,3个基因的DNA序列均由一个内含子和两个外显子组成,而且第一个外显子的核苷酸序列长度均为180bp,第二个外显子不仅长度不同,且氨基酸位点的变异频率更高。CitCHS1、CitCHS2和CitCHS3的ORF分别为1170 bp、1176 bp和1194 bp。5、CitCHS1、CitCHS2在转基因植株中对类黄酮生物合成的调控作用通过植物转基因技术在烟草上异源表达柑橘CitCHS1基因以确认CitCHS1的功能。阳性植株上,CitCHS1基因在茎中的表达量最低,在叶片中的表达量最高,在根中的表达量居中。总黄酮含量的检测结果显示,在转基因烟草的叶片中,类黄酮含量最高,分别是空白对照和野生型对照的1.33倍和1.41倍。在茎和根中,过表达植株上类黄酮含量与对照组相比,略有升高,但无显着差异。相关性分析显示,在过表达CitCHS1基因的阳性植株上,CitCHS1的表达水平与类黄酮的含量存在正相关关系(R=0.73),在根和茎中也存在一定的相关性,但相关性不强(R<0.5)。在过量表达CitCHS2基因的柑橘上,共获得4株阳性植株,3株上调表达,1株下调表达。在CitCHS2基因上调表达的植株中黄酮含量相应增加,CitCHS2基因下调表达后,类黄酮含量相应下降。相关性分析显示,CitCHS2基因的表达与类黄酮含量呈显着正相关。6、CitCHS3基因的功能验证构建了pGBi干扰载体遗传转化柑橘获得转基因植株,4株阳性植株上,CitCHS3基因平均干扰效果达76.01%(与野生型对照相比)和61.71%(与空载体对照相比)。对总黄酮的含量测定发现:与对照相比,4株RNAi阳性植株上总黄酮含量下降明显,表明CitCHS3基因对类黄酮的含量有重要的影响。7、CitCHS家族成员对类黄酮生物合成的影响效应利用CitCHS的保守序列通过VIGS转基因沉默CitCHS的叁个主要成员基因,4株阳性植株中,3个CitCHS基因的表达水平分别平均下调81.03%,79.67%和76.60%;与对照组相比,4株阳性植株上总黄酮含量平均下降41.11%。相关性分析显示,总类黄酮含量与3个CHS基因的表达水平之间的相关性分别为0.90,0.43和0.80,CHS基因的表达量之和与总黄酮的含量呈显着正相关。CHS基因家族不同成员存在表达差异,它们对类黄酮合成的贡献力也因此不同。进一步的分析结果表明,在转基因植株的叶片中,CitCHS1基因的表达量对CHS基因的总表达水平贡献最少,占12.02%;CitCHS2基因的贡献最大,占55.52%;CitCHS3基因的贡献力介于CitCHS1和CitCHS2基因之间,占32.47%。在所有植株的叶片中,叁个基因的表达对CHS基因的总表达水平的贡献分别为13.29%、58.63%和28.09%。基因的表达水平与类黄酮的含量之间的相关性分析结果表明,CitCHS1对黄烷酮类和二氢黄酮醇类含量的影响最大,CitCHS2对黄酮类和黄酮醇类的影响最大,CitCHS3对总黄酮含量的影响最大。同时,CitCHS2和CitCHS3基因之间存在显着的共表达。(本文来源于《西南大学》期刊2019-03-18）
冯立娟,尹燕雷,杨雪梅,唐海霞,李英朋[5]（2019）在《石榴查尔酮合成酶蛋白的生物信息学分析》一文中研究指出本研究用生物信息学方法对石榴及其他19个物种CHS蛋白的系统进化和motif元件进行分析,重点预测分析石榴、巨桉和拟南芥CHS蛋白的理化性质、氨基酸组成、磷酸化位点和二级结构。结果表明,石榴与巨桉亲缘关系最近,与拟南芥最远。石榴、巨桉和拟南芥CHS蛋白由20种氨基酸组成,数量和比例存在差异,石榴和拟南芥中亮氨酸数量最多,巨桉中丙氨酸最多;存在丝氨酸、苏氨酸和酪氨酸3个磷酸化结合位点,多数发生在苏氨酸和丝氨酸位置上;二级结构由α-螺旋、延伸链、无规则卷曲和β-转角构成,α-螺旋和无规则卷曲占比较高。在20个物种CHS蛋白的motif元件中,石榴CHS蛋白motif数量和位置与巨桉完全一致,与大多数物种相似,与拟南芥差异较大。本研究结果可为深入研究CHS生物学功能及其调控石榴果实呈色的机理提供理论依据。(本文来源于《山东农业科学》期刊2019年02期）
张声祥,施圆圆,王晨凯,赵德蕊,杨青山[6]（2019）在《异叶天南星查尔酮合成酶和异构酶基因的克隆及蛋白的结构性质分析》一文中研究指出查尔酮合成酶(CHS)和查尔酮异构酶(CHI)是黄酮类物质生物合成途径中的关键酶,该研究从中药异叶天南星(Arisaema heterophyllum Blume,Ah)转录组数据库中筛选出查尔酮合成酶基因(Ah CHS)和查尔酮异构酶基因(Ah CHI),利用RT-PCR技术克隆了它们的开放阅读框(ORF)部分,并对其编码蛋白Ah CHS和Ah CHI的理化性质、表达及结构特点进行分析。Ah CHS的ORF长度为1 176 bp,编码392个氨基酸的蛋白质;而Ah CHI的ORF长度为630 bp,编码蛋白含209个氨基酸。Ah CHS作为对称同二聚体,N端螺旋互相交换,每个单体由2个亚结构域组成,位于2个亚结构域之间交界处的4个保守的氨基酸残基构成了酶的活性中心; Ah CHI的叁级结构采用了开放的β-叁明治褶皱,1个大的β折叠片层(β4～β11)和1个α螺旋片层(α1～α7)组成其核心结构,其中β4,β5,α4和α6在不同物种间高度保守,部分疏水氨基酸形成了酶的活性位点。系统进化树分析发现Ah CHS与火鹤花CHS亲缘关系最近;而Ah CHI与紫牡丹CHI亲缘关系最近。表达分析表明编码Ah CHS的基因在根和块茎中的表达量明显比叶多,而编码Ah CHI的基因在块茎部位的表达量最高。该研究为Ah CHS和Ah CHI功能的进一步研究及植物黄酮类化合物生物合成途径的解析提供了基础。(本文来源于《中国中药杂志》期刊2019年09期）
张变玲,黄雪梅,刘心怡,谢彪,黄合庆[7]（2018）在《人参查尔酮合成酶基因PgCHS1的克隆与表达分析》一文中研究指出该文探究了人参查尔酮合成酶(chalcone synthase, CHS)基因的表达模式与人参黄酮含量及抗胁迫之间的关系。作者从新鲜4年生人参根中提取总RNA,反转录合成cDNA,根据转录组测序结果,利用PCR扩增克隆人参CHS基因的cDNA全长,对其进行生物信息学分析,采用荧光定量PCR(qRT-PCR)分析人参根、茎、叶和胁迫条件下发根中CHS基因的表达水平,并测定其黄酮含量。克隆得到人参CHS,命名为PgCHS1,序列完整开放读码框(ORF)长度为1 182 bp,编码393个氨基酸。分析表明,该序列属于CHS家族基因,其具有查尔酮合成酶催化中心4个高度保守的残基Cys164、Phe215、His303、Asn336和形成活性中心构象所必需的13个关键残基Pro138、Gly163、Gly167、Leu214、Asp217、Gly262、Pro304、Gly305、Gly306、Gly335、Gly374、Pro375、Gly376。基因表达分析表明,Pg CHS1基因在叶片中的表达量最高,其次是茎、根和发根,并且受SA和MeJA的诱导。人参黄酮含量与基因表达水平高度一致。结果提示, PgCHS1基因参与人参黄酮的生物合成,从而保护人参免受外界的胁迫。(本文来源于《中国细胞生物学学报》期刊2018年12期）
张思源,刘亚岚,唐小慧,陈超,贺霞[8]（2018）在《基于查尔酮合成酶基因序列多态性鉴定红花不同种质资源》一文中研究指出目的:开展查尔酮合成酶基因序列多态性研究,以便更准确地对红花种内不同种质资源进行分子鉴定。方法:研究选用全国6个省收集到29份红花种质资源,对常用条形码片段(ITS2、psbA、ITS、ycf5及rpoC1)及查尔酮合成酶基因片段(CtCHS1)进行克隆,采用DnaSP 4.1分析序列多态性,采用软件MAGA 5.0判断克隆片段对红花不同种质资源进行鉴定。结果:psbA、ITS及ycf5对29份红花种质资源的克隆序列完全一致,不能区分29份材料;ITS2序列存在1个位点差异,将29份材料分为2类;rpoC1序列存在4个位点差异,将29份材料分为4类;CtCHS1序列存在23个位点差异,能将29份材料分为13类。结论:研究结果表明基于查尔酮合成酶基因序列多态性能对红花不同种质资源进行鉴定,结果丰富了中药条形码鉴定系统,为后续开发功能标记应用于红花分子辅助选育奠定了基础。(本文来源于《中药材》期刊2018年08期）
何春艳,甘露,闫蒙举,张兰,苏浩天[9]（2018）在《草地早熟禾查尔酮合成酶基因PpCHS1克隆、功能与表达分析》一文中研究指出以草地早熟禾转录组数据为基础,克隆得到PpCHS1基因cDNA序列。其包含查尔酮合成酶基因(CHS)家族保守区域,与山羊草、大麦等植物的查尔酮合成酶基因相似度高;属于疏水性蛋白,Ⅲ型聚酮合酶,具有同源二聚体结构,亚细胞定位结果显示基因编码的蛋白定位于细胞质。通过对PpCHS1进化和表达分析表明,其功能可能与花发育相关并能促进黄酮类物质的合成,受紫外线和高盐的诱导,同时在外施MeJA下持续高表达,推断PpCHS1可能参与非生物胁迫与生物胁迫的防御。(本文来源于《中国草地学报》期刊2018年04期）
刘佳[10]（2018）在《中国石竹查尔酮合成酶基因克隆、鉴定及表达分析》一文中研究指出查尔酮合成酶(chalcone synthase,CHS)是花色素合成途径中的关键酶。中国石竹(Dianthus chinensis)花色众多且抗逆性强,因此广泛应用于花坛、地被等。VIGS(virus-induced genesilencing)可快速、有效地鉴定植物基因功能。获得与中国石竹花色有关基因,对今后石竹属植物花色遗传改良具有重要意义。本试验根据Genbank中香石竹CHS基因(Z67982)设计特异引物,通过RT-PCR、3’-RACE在中国石竹中克隆获得DcCHS,采用VIGS对其功能进行了验证,并对其表达进行了分析,主要研究结果如下:1、克隆得到了片段大小为898bp的Dc CHS基因序列(KX893854)。2、以中国石竹不同花色花瓣为材料进行q RT-PCR分析,发现随花瓣颜色加深Dc CHS的表达量增加,表明Dc CHS可能与石竹花色有关。3、对Dc CHS不同片段设计引物,进行RT-PCR,分别构建了2个TRV2重组载体,农杆菌菌液侵染花蕾后会发现含pTRV2/Dc CHS_(407)的出现白色或颜色变浅的现象,经q RT-PCR分析发现其CHS表达量下降,而含pTRV2/Dc CHS_(412)的沉默效果不明显。表明Dc CHS与石竹花色有关,但不同的基因片段沉默效果不同。4、以中国石竹不同发育时期的花蕾为材料进行q RT-PCR分析,发现Dc CHS的表达量在花蕾生长前期最高,且显着高于生长中期和花前期,而生长中期和花前期的Dc CHS表达量无显着差异,表明查尔酮合成酶基因表达量随花蕾发育时期而下降。(本文来源于《内蒙古农业大学》期刊2018-06-01）
查尔酮合成酶论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
查尔酮合成酶(Chalcone synthase,CHS)是生物合成黄酮类的关键酶和限速酶。该研究从膜荚黄芪中克隆了1个CHS基因,Genbank登陆号为KY086285(AmCHS)。AmCHS全长cDNA为1 473 bp,开放阅读框为1 170 bp,编码389个氨基酸,其分子量为42 828.51 Da,等电点为6.05。生物信息学分析表明:AmCHS蛋白与其它植物CHS同源,无信号肽,定位于细胞质。实时荧光定量PCR和高效液相色谱分析结果显示:AmCHS在根、茎、叶中的表达水平与异黄酮的积累变化一致,证明了AmCHS的表达与膜荚黄芪异黄酮的积累密切相关。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
查尔酮合成酶论文参考文献
[1].原晓龙,李云琴,王毅.滇牡丹中3个类查尔酮合成酶基因的克隆与表达[J].浙江农业学报.2019
[2].郑涵予,袁元,金河延,于洋,全雪丽.膜荚黄芪查尔酮合成酶基因的克隆与表达分析[J].延边大学农学学报.2019
[3].梁先利,张丽清,柯丽萍,孙玉强.彩色棉查尔酮合成酶基因GhCHS1的克隆和功能分析[J].农业生物技术学报.2019
[4].王志彬.柑橘查尔酮合成酶基因遗传多样性及其功能研究[D].西南大学.2019
[5].冯立娟,尹燕雷,杨雪梅,唐海霞,李英朋.石榴查尔酮合成酶蛋白的生物信息学分析[J].山东农业科学.2019
[6].张声祥,施圆圆,王晨凯,赵德蕊,杨青山.异叶天南星查尔酮合成酶和异构酶基因的克隆及蛋白的结构性质分析[J].中国中药杂志.2019
[7].张变玲,黄雪梅,刘心怡,谢彪,黄合庆.人参查尔酮合成酶基因PgCHS1的克隆与表达分析[J].中国细胞生物学学报.2018
[8].张思源,刘亚岚,唐小慧,陈超,贺霞.基于查尔酮合成酶基因序列多态性鉴定红花不同种质资源[J].中药材.2018
[9].何春艳,甘露,闫蒙举,张兰,苏浩天.草地早熟禾查尔酮合成酶基因PpCHS1克隆、功能与表达分析[J].中国草地学报.2018
[10].刘佳.中国石竹查尔酮合成酶基因克隆、鉴定及表达分析[D].内蒙古农业大学.2018
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