导读:本文包含了配子体发育论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:孢子,花粉,发生,铁线,花粉管,千里光,雌蕊。
配子体发育论文文献综述
杨艺,王娜,王奎玲,刘庆华,李伟[1]（2019）在《大叶铁线莲大小孢子发生及雌雄配子体发育》一文中研究指出铁线莲属植物在花部形态和结构方面存在较大差异,遗传背景相对复杂。因此,在杂交育种前对其进行胚胎学研究具有重要意义。利用石蜡切片技术对大叶铁线莲(Clematis heracleifolia)大小孢子发生及雌雄配子体发育过程进行研究,结果显示,大叶铁线莲具雄株和两性花植株。雄花中,雄配子体发育偶见败育现象;而两性花中多数花粉发育异常,形成功能性雌花。正常发育的两性花中,雄蕊较雌蕊先发育完全。花药4室,具腺质绒毡层,偶见变形绒毡层。胞质分裂为同时型,以四面体型四分体为主,偶见左右对称型。成熟花药中,花药壁由纤维状加厚的表皮及药室内壁构成,花粉粒为2-细胞型,近球状,散沟型。子房1室,内含少量退化胚珠及1个发育正常的胚珠,倒生,单珠被,薄珠心,蓼型胚囊,具线形大孢子四分体及双核反足细胞。大叶铁线莲可能处于相对进化的过渡地位。在杂交育种中,建议以雄花植株作为父本,两性花植株仅用作母本;在两性花花芽大小为0.5–0.8 cm时进行去雄处理。(本文来源于《植物学报》期刊2019年05期）
卢雪佳,刘方炎,高成杰,李昆[2]（2019）在《车桑子大孢子发生与雌配子体发育》一文中研究指出采用常规石蜡切片法,对车桑子大孢子的发生和雌配子体的发育进行观察,探讨车桑子自然结籽率低的原因和明确其胚胎发育特征。结果表明:(1)车桑子花柱有花柱道,子房3室,中轴胎座,横生胚珠,每心室两枚胚珠,双珠被,厚珠心,无承珠盘。(2)位于珠心表皮细胞下的孢原细胞经平周分裂产生造孢细胞,造孢细胞发育为大孢子母细胞,大孢子母细胞经减数分裂形成线性四分体,靠近珠孔端3个大孢子退化消失,靠合点端大孢子发育为功能大孢子,大孢子发生类型为单孢子发生型。(3)单核胚囊经3次有丝分裂形成7细胞8核的成熟胚囊,胚囊发育类型为蓼型。(4)花器官形态的变化和大孢子发育过程有一定联系,可根据雌花形态特征大致判断大孢子发育时期。研究认为,车桑子雌配子体发育过程中出现的胚囊不中空、游离核不进一步细胞化等异常现象,可能是导致车桑子自然结籽率低的原因之一。(本文来源于《植物研究》期刊2019年05期）
石艳兰,林宇环,赵元杰,刘清波,易自力[3]（2019）在《二倍体芒小孢子发生及雄配子体发育研究》一文中研究指出该实验通过采集天然二倍体芒不同发育时期的幼穗,进行卡宝品红染色压片和石蜡切片制作,观察芒的花药发育过程,为芒的生殖生物学及其系统发育研究奠定理论基础。结果表明:(1)天然二倍体芒雄蕊3枚,雄蕊花药四室,花药壁由4层细胞组成,从外向内依次是表皮、药室内壁、中层、绒毡层,花药壁发育属于基本型;花药成熟时,中层和绒毡层降解消失,或者仅存痕迹,只剩表皮和纤维层细胞,但此时可观察到部分绒毡层降解延迟现象。(2)花粉母细胞减数分裂为连续型,成熟花粉粒为3-细胞型;花粉母细胞减数分裂后期Ⅱ出现染色体分裂不同步现象。(3)雄配子体发育过程中,同一花粉囊的花粉粒发育不同步;雌、雄配子体发育也不同步,且雄蕊先成熟。(本文来源于《西北植物学报》期刊2019年05期）
卢雪佳,刘方炎,高成杰,李昆[4]（2019）在《车桑子小孢子发生与雄配子体发育》一文中研究指出为了解干热河谷区车桑子(Dodonaea viscosa)胚胎学特征及其结籽率低的原因,采用常规石蜡切片法和电镜扫描技术对车桑子小孢子发生、雄配子体发育和花粉的形态特征进行了观察。结果表明,车桑子花药具有4个花粉囊。完整的花药壁从外到内依次为表皮、药室内壁、2～3层中层细胞和绒毡层;绒毡层类型是腺质绒毡层。花药成熟期,中层、绒毡层均退化消失。小孢子母细胞进行同时型胞质分裂;四分体为四面体型结构。成熟的花粉为二细胞型。花粉近球形,外壁密布颗粒状纹饰,具有3条不构成合沟的萌发沟。雄性生殖发育过程出现的异常现象可能是干热河谷地区车桑子结籽率低的原因之一。(本文来源于《热带亚热带植物学报》期刊2019年02期）
段存英[5]（2019）在《拟南芥KETCH1通过介导核糖体蛋白RPL27a的核积累调控配子体发育》一文中研究指出开花植物有性生殖的主要特征是精细胞与卵细胞及中央细胞的双受精过程。雌雄配子体的发育对于双受精过程的顺利进行至关重要。其中小孢子母细胞与大孢子母细胞经过一系列的减数分裂及有丝分裂过程分别产生雄配子与雌配子。研究表明,有丝分裂过程的异常往往会导致细胞死亡,这暗示着有丝分裂的调控对于配子体的发育过程至关重要。在核糖体合成异常的突变体中,许多配子体致死都是由于有丝分裂缺陷导致。人们根据同源比对在植物中已经发现了大量的核糖体蛋白(Ribosomal Proteins,RPs),但是关于这些蛋白是如何被调控的,比如动态的亚细胞靶向过程,目前还尚不清楚。在本研究中,我们鉴定了一个拟南芥importinβ蛋白家族成员KETCH1,通过介导核糖体蛋白L27a(RPL27a)的核积累,参与调控配子体的发育。本论文的主要研究成果和结论如下:(1)KETCH1功能缺失导致雌雄配子体传代率下降已有研究表明,KETCH1功能缺失会造成纯合致死,得不到纯合体植株(Zhang et al.,2017)。我们用野生型Col-0作为对照,对ketch1-2/+进行育性分析,发现杂合突变体角果中有47%的败育胚珠,败育率显着高于胚致死的25%。此外,ketch1-2/+中小而皱缩的胚珠是未受精的,胚囊中含有不规则分布的细胞核。正反交实验结果显示,ketch1-2的雌雄配子体传代率均显着降低,表明KETCH1对于雌雄配子体的功能至关重要。(2)KETCH1功能缺失导致单细胞小孢子和功能大孢子发育停滞为了确定雄配子体传代率降低的原因,我们通过亚历山大染色、DAPI染色以及扫描电镜观察对花粉的活性、核发育及外壁形态进行了观察。与野生型相比,ketch1-2/+中有32%左右的花粉败育。我们通过半薄切片观察了不同发育时期的花药。在发育的第10期,突变体与野生型相比,花粉发育并没有任何异常。然而第11期开始出现异常,突变体小孢子只含有一个细胞核并且有许多异常的大液泡存在,暗示了ketch1-2小孢子的第一次有丝分裂出现异常。为了确定雌配子体发育异常,我们通过组织光学切片对不同发育时期的胚珠进行观察。ketch1-2/+在3-I时期可以正常形成功能大孢子,但是有30%左右的功能大孢子有丝分裂过程出现异常,导致突变体成熟胚囊中细胞核数目呈现不规则状态,从1个到6个不等。这些结果证明,KETCH1对于单细胞小孢子和功能大孢子发育过程中的第一次有丝分裂极为重要。(3)KETCH1组成型表达,并且在生殖组织中高量表达荧光定量PCR结果以及KETCH1启动子驱动GUS报告基因的转基因株系均显示KETCH1是组成型表达,并且在生殖组织如花序、胚珠及花粉中高量表达。通过分析KETCH1启动子驱动核靶向荧光蛋白YFP的转基因株系,表明KETCH1在配子体发育过程中的生殖细胞中高量表达。(4)KETCH1在配子体发育过程中的功能并不依赖HYL1之前的研究报道显示,KETCH1能够介导miRNA的关键调控因子HYL1的核质穿梭过程。尽管HYL1功能缺失突变会导致植株育性下降,但是我们的结果表明,hyl1-2雌雄配子体传代率与野生型相比没有差异,这说明HYL1并不参与KETCH1介导的配子体发育过程。(5)RPL27aC在细胞核中的积累需要KETCH1的运输根据动物细胞同源蛋白IPO5的研究结果显示,KETCH1可能参与核糖体蛋白的核输入过程。通过BiFC和体外pull-down实验,证明KETCH1与RPL27aC互作。而且我们的实验结果也证明了核输入蛋白与底物分子的结合是特异的。并且在ketch1-2背景下,RPL27aC在花粉及花粉管的细胞核中的积累量显着降低,同样的在KETCH1-RNAi植株的叶片原生质体中,RPL27aC核积累量也是降低的,这表明RPL27aC是KETCH1的底物蛋白。已有研究表明,RPL27a功能缺失突变会导致雌雄配子体传代率显着下降,这与它在KETCH1调控的配子发生中的功能相一致。因此,KETCH1很有可能是通过介导RPL27a的核积累来调控核糖体生物发生过程,进而调控配子发生期间的有丝分裂过程。核转运蛋白是一类介导核质穿梭的分子伴侣。本论文结果显示,拟南芥核转运蛋白KETCH1功能缺失导致减数分裂后的雌雄配子体发育停滞。同时我们证明了KETCH1在配子体发育过程中的功能并不依赖已报道的底物HYL1。相反的,KETCH1对RPL27a的核积累至关重要,并且RPL27a的突变导致了类似的配子体缺陷。因此我们推测,核糖体蛋白核积累的减少可能导致了细胞翻译能力下降,进而在配子发生过程中触发有丝分裂细胞周期的停滞。(本文来源于《山东农业大学》期刊2019-03-15）
谢欣,钱秋博言,王蕾,王乾兴,平军娇[6]（2019）在《千里光配子体发育、配子形成与双受精的细胞学特征（英文）》一文中研究指出千里光(Senecio scandens Buch.-Ham.ex D.Don)是具有良好开发前景的传统抗菌中草药。为了探讨该物种有性生殖的细胞学机制,实现在物种的遗传育种过程中的指导作用,本研究从细胞学角度观察了千里光配子体发育、配子形成和双受精作用。结果表明,在生殖核分裂为精细胞的过程中,其位置和形态呈现差异,表现为"二态"精细胞;此外,雌配子体的形成符合孢子发育模式,成熟胚囊的形态结构为卵形或梨形,成熟的卵细胞和极核位于珠孔端。根据上述结果可推断,合子在随后二分裂时表现为"基细胞—顶细胞"极性,可能与"二态"精细胞导致的合子细胞质不均一有关。此外,从植物分类学角度,千里光的"二态"精细胞,胚囊极性和合子极性可成为菊科近缘植物分类的细胞学依据。(本文来源于《植物研究》期刊2019年01期）
刘魏,童永鳌,白洁[7]（2018）在《水稻雄配子体发育过程中tRNA片段的生物信息学分析》一文中研究指出tRNA片段(t RF)是t RNA通过非随机剪切产生的RNA片段,其产生和功能机制尚不明确;而在水稻(Oryza sativa)雄配子体发育过程中,人们对t RNA更是知之甚少。通过高通量测序,在水稻雄配子体发育过程中发现了长度范围较大的t RFs;进一步采用logo对t RFs两端的序列进行分析,发现了4个有序列特征(其中3个未见报道)和1个无序列特征的酶切位点;通过NCBI Blast预测了t RF靶基因,发现其大多靶向转座因子。研究结果对揭示t RF产生机制以及水稻雄配子体发育研究有一定的参考价值。(本文来源于《植物学报》期刊2018年05期）
王艳杰,任文秀,孔冬瑞[8]（2018）在《地椒小孢子发生和雄配子体发育》一文中研究指出【目的】增加唇形科胚胎学资料,为澄清百里香属系统学位置提供胚胎学依据,为百里香的引种驯化提供基础资料。【方法】常规的石蜡切片法。【结果】花药具四小孢子囊。花药壁为双子叶型的发育方式,由表皮、药室内壁、中层以及绒毡层4层细胞构成。药室内壁细胞以及部分药隔细胞细胞壁具纤维性加厚。腺质绒毡层细胞具二核,药隔向花粉囊内突起形成具绒毡层功能的花粉囊类胎座。小孢子母细胞减数分裂过程中胞质分裂属于同时型,形成的四分体为四面体型。成熟花粉粒是叁细胞型,具6个萌发沟。花粉粒败育普遍。【结论】小孢子发生和雄配子体发育特征,尤其花粉粒具叁细胞和6个萌发沟支持分子系统中将地椒所在的百里香属从野芝麻亚科转移至荆芥亚科的处理,花粉败育可能是导致地椒结实率低的原因之一。(本文来源于《云南农业大学学报(自然科学)》期刊2018年05期）
姜玲[9]（2018）在《组蛋白甲基化修饰对油菜开花的调控和在雄配子体发育中的分布研究》一文中研究指出组蛋白甲基化修饰对植物生长发育有着非常重要的调控作用。拟南芥AtSDG8是一种组蛋白甲基转移酶,能特异性催化H3K36me,影响植物开花。油菜是重要的油料作物,其开花和雄配子体发育与产量、品质有密切的关系,但有关组蛋白甲基化修饰对油菜开花的调控及在减数分裂过程中的分布鲜有报道。本研究以甘蓝型油菜(XY15)为研究对象,用表观遗传学、细胞学和分子生物学等手段系统研究组蛋白甲基化修饰对油菜开花的调控及在雄配子体发育中的分布,获得了如下结果:一、BnaSDG8介导的组蛋白甲基化修饰对油菜开花的调控机制1)从XY15中克隆了2个BnaSDG8基因:BnaSDG8.A和BnaSDG8.C,经比对,两者均含有与AtSDG8相同的结构域:CW、AWS、SET和post-SET(C);时空表达定量分析显示:BnaSDG8.A和BnaSDG8.C在植物生长发育的不同阶段、各器官中均有表达,且两者差异表达;2)系统建树分析发现:SDG8同源蛋白在进化上非常保守且都只含有1个拷贝;BnaSDG8未发生复制和叁倍体化,但其蛋白N端一段由39个氨基酸构成的序列(命名为NNH结构域)在BnaSDG8.C中复制1次,含有2个连续的NNH;3)功能互补实验显示:携带有35s::BnaSDG8.A和35s::BnaSDG8.C的转基因株系均表现出晚于sdg8-2开花,接近于Col-0开花的表型;在转RNA干扰载体的转基因油菜中,BnaSDG8.A和BnaSDG8.C转录水平的显着降低会导致植株早花,说明BnaSDG8.A和BnaSDG8.C均具有与AtSDG8相似的调控植物开花的功能;4)进一步对开花调控基因BnaFLCs的ChIP实验结果显示:与对照XY15相比,在RNAi转基因油菜中,H3K36me1:BnaFLC3-2上无变化,其余BnaFLCs上均上升;H3K36me2:BnaFLC1-1和BnaFLC5-2上上升,其余BnaFLCs上无变化;H3K36me3:BnaFLC3-1、BnaFLC4和BnaFLC5-2上上升,其余BnaFLCs上均下降;H3K4me3:BnaFLC1-2和BnaFLC3-1上上升,BnaFLC1-3和BnaFLC5-1上下降,其余BnaFLCs上无变化。说明BnaSDG8.A和BnaSDG8.C编码的组蛋白甲基转移酶并未参与所有的BnaFLCs染色质上H3K36me3的沉积,而仅仅参与了BnaFLC2染色质上H3K36me3的沉积,影响BnaFLC2的转录水平来调控油菜开花的机制。二、油菜花粉母细胞发育为雄配子过程中组蛋白甲基化修饰的分布1)组织化学、细胞学显微观察发现:当花蕾长度介于1.0-2.5mm时,能分别收集到花粉母细胞、二分体、四分体、单核花粉、叁核花粉等处于雄配子体不同发育阶段的材料,建立了花蕾形态大小与花粉母细胞减数分裂过程和发育时期的对应关系;2)用Immunostaining和激光共聚焦技术分别对雄配子体发育过程中的组蛋白甲基化修饰的分布进行观察分析,结果显示:H3K4me2、H3K27me2、H3K36me2叁种组蛋白甲基化修饰在油菜花粉母细胞减数分裂过程中,其富积位置与染色体所在位置高度重合;在单核花粉中,均分布于细胞核内;在成熟的叁核花粉中,均仅分布于营养细胞核内;3)在油菜雄配子体发育的各个阶段,H3K4me2和H3K36me2富积强度均明显强于H3K27me2富积强度。(本文来源于《湖南农业大学》期刊2018-06-01）
林树燕,邵丽娟,李洁,张莉,丁雨龙[10]（2018）在《孝顺竹(Bambusa multiplex)大孢子发生与雌配子体发育研究（英文）》一文中研究指出为了解孝顺竹(Bambusa multiplex)的大孢子及雌配子体的发育过程,利用扫描电镜对孝顺竹的雌蕊形态以及大孢子和雌配子体的发育进行了观察。结果表明,孝顺竹雌蕊单子房,1室,双珠被,薄珠心;大孢子母细胞是由1个雌性孢原细胞直接发育而成,大孢子四分体为线性,位于珠孔端的1个大孢子分化成为功能大孢子,然后由功能大孢子依次经历二核、四核、最终形成1卵细胞2助细胞2极核3反足细胞的成熟胚囊。此外,孝顺竹为雌雄同熟类型,根据雌、雄蕊发育的对应关系,从雄蕊形态可估测雌配子体发育阶段。有少数雌蕊出现败育现象,可能是孝顺竹结实率低的原因之一。(本文来源于《热带亚热带植物学报》期刊2018年03期）
配子体发育论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
采用常规石蜡切片法,对车桑子大孢子的发生和雌配子体的发育进行观察,探讨车桑子自然结籽率低的原因和明确其胚胎发育特征。结果表明:(1)车桑子花柱有花柱道,子房3室,中轴胎座,横生胚珠,每心室两枚胚珠,双珠被,厚珠心,无承珠盘。(2)位于珠心表皮细胞下的孢原细胞经平周分裂产生造孢细胞,造孢细胞发育为大孢子母细胞,大孢子母细胞经减数分裂形成线性四分体,靠近珠孔端3个大孢子退化消失,靠合点端大孢子发育为功能大孢子,大孢子发生类型为单孢子发生型。(3)单核胚囊经3次有丝分裂形成7细胞8核的成熟胚囊,胚囊发育类型为蓼型。(4)花器官形态的变化和大孢子发育过程有一定联系,可根据雌花形态特征大致判断大孢子发育时期。研究认为,车桑子雌配子体发育过程中出现的胚囊不中空、游离核不进一步细胞化等异常现象,可能是导致车桑子自然结籽率低的原因之一。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
配子体发育论文参考文献
[1].杨艺,王娜,王奎玲,刘庆华,李伟.大叶铁线莲大小孢子发生及雌雄配子体发育[J].植物学报.2019
[2].卢雪佳,刘方炎,高成杰,李昆.车桑子大孢子发生与雌配子体发育[J].植物研究.2019
[3].石艳兰,林宇环,赵元杰,刘清波,易自力.二倍体芒小孢子发生及雄配子体发育研究[J].西北植物学报.2019
[4].卢雪佳,刘方炎,高成杰,李昆.车桑子小孢子发生与雄配子体发育[J].热带亚热带植物学报.2019
[5].段存英.拟南芥KETCH1通过介导核糖体蛋白RPL27a的核积累调控配子体发育[D].山东农业大学.2019
[6].谢欣,钱秋博言,王蕾,王乾兴,平军娇.千里光配子体发育、配子形成与双受精的细胞学特征（英文）[J].植物研究.2019
[7].刘魏,童永鳌,白洁.水稻雄配子体发育过程中tRNA片段的生物信息学分析[J].植物学报.2018
[8].王艳杰,任文秀,孔冬瑞.地椒小孢子发生和雄配子体发育[J].云南农业大学学报(自然科学).2018
[9].姜玲.组蛋白甲基化修饰对油菜开花的调控和在雄配子体发育中的分布研究[D].湖南农业大学.2018
[10].林树燕,邵丽娟,李洁,张莉,丁雨龙.孝顺竹(Bambusamultiplex)大孢子发生与雌配子体发育研究（英文）[J].热带亚热带植物学报.2018
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