利用CRISPR/Cas9技术对miRNA-125a进行基因编辑的实验研究

利用CRISPR/Cas9技术对miRNA-125a进行基因编辑的实验研究

论文摘要

近年来, CRISPR/Cas9技术被迅速应用于生物学研究的各个领域。miRNA-125a已被证实与生殖密切相关,研究者在自然流产的患者中发现了异常的miRNA-125a。该研究利用CRISPR/Cas9技术在人绒毛膜滋养层细胞HTR8-S/Vneo中对miRNA-125a进行了定点编辑。对于定点敲除,我们首先在pX458表达载体的基础上额外引入一组启动子和sgRNA骨架序列用于片段敲除,此后分别设计用于单点敲除和片段敲除的sgRNA进行表达载体的构建,表达载体转染HTR8细胞后通过流式分选和T7EI酶切鉴定阳性单克隆;对于定点敲入,我们在体外构建供体载体,与CRISPR表达载体共转染HTR8细胞,通过流式分选和PCR鉴定阳性单克隆。DNA测序结果显示,敲除及敲入阳性单克隆细胞系在指定区域的碱基序列发生了改变; RT-qPCR结果显示,阳性单克隆细胞系中mi RNA-125a-5p和mi RNA-125a-3p的表达量较野生型也发生了相应变化;体外实验还显示, miRNA-125a有抑制HTR8-S/Vneo细胞系增殖及迁移的功能。研究证实, CRISPR/Cas9技术在细胞系中编辑mi RNAs是有效可行的,且对于miRNA-125a的定点敲除,片段敲除的效果要好于单点敲除。

论文目录

  • 1 材料与方法
  •   1.1 实验材料
  •     1.1.1 细胞、菌株和质粒
  •     1.1.2 试剂、引物和寡核苷酸链
  •     1.1.3 实验仪器
  •   1.2 miRNA-125a敲除细胞系的构建
  •     1.2.1 改造pX458表达载体
  •     1.2.2 设计sgRNA
  •     1.2.3 构建表达载体
  •     1.2.4 验证sgRNA活性
  •     1.2.5 miRNA-125a敲除细胞系的构建及鉴定
  •     1.2.6 敲除效率检验
  •     1.2.7 敲除细胞系稳定性检验
  •     1.2.8 细胞功能验证
  •   1.3 miRNA-125a敲入细胞系的构建
  •     1.3.1 设计sgRNA并验证其活性
  •     1.3.2 设计同源臂, 构建供体载体
  •     1.3.3 miRNA-125a敲入细胞系的构建、鉴定及敲入效率检验
  •     1.3.4 构建miRNA-125a过表达载体并探索其表达量可能影响因素
  •   1.4 统计学分析
  • 2 实验结果
  •   2.1 敲除载体构建及活性检测
  •   2.2 miRNA-125a敲除细胞系鉴定结果
  •   2.3 敲除效率检验及稳定性检验
  •   2.4 敲除细胞系功能验证
  •   2.5 敲入载体构建及活性检测
  •   2.6 miRNA-125a敲入细胞系鉴定、验证敲入效率并探索其表达量可能影响因素
  • 3 讨论
  • 文章来源

    类型: 期刊论文

    作者: 王瑚,张璐,马旭,夏红飞

    关键词: 人绒毛膜滋养层细胞,片段敲除,定点敲入

    来源: 中国细胞生物学学报 2019年02期

    年度: 2019

    分类: 基础科学

    专业: 生物学

    单位: 国家卫生计生委科学技术研究所遗传优生中心,北京协和医学院研究生院

    基金: 国家自然科学基金(批准号:81771590)资助的课题~~

    分类号: Q78

    页码: 218-227

    总页数: 10

    文件大小: 3371K

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