莱茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii)细胞核转化体系的构建及两种外源蛋白的表达研究

莱茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii)细胞核转化体系的构建及两种外源蛋白的表达研究

论文摘要

莱茵衣藻是一种成熟的模式生物,其细胞核、线粒体、叶绿体三套基因组都可以进行遗传转化,具有培养条件简单、生长速度快、光合效率高等优点,基于细胞核转化体系可构建生产高附加值蛋白的“衣藻生物反应器”,具有广阔的应用前景。本课题首先构建莱茵衣藻细胞核转化体系,研究环形质粒的转化,成功表达人表皮生长因子(EGF)蛋白,再研究线性质粒的转化,解析单酶切条件及线性质粒共转化,为“衣藻生物反应器”提供了理论基础和试验指导。(1)通过研究衣藻核转化的关键因素,成功构建莱茵衣藻细胞核转化体系。衣藻培养条件:接种比为1%,培养温度20℃,光暗周期为16h/8h,光照强度为12000Lx,摇床转速120r/min,培养5天达到对数生长中期,呈深绿色。衣藻核转化条件:采用对数生长中期的衣藻,最佳质粒用量为3μg,最佳涡旋振荡时间为20s,TAP固体培养基中博来霉素抗性筛选浓度为15μg/mL,TAP液体培养基中博来霉素抗性筛选浓度为5μg/mL。经PCR、RT-PCR检测,证明ble基因已经成功整合进入衣藻细胞核基因组中,并在转录水平上表达。(2)基于衣藻核转化体系的构建,探究人表皮生长因子基因(EGF)的转化及表达。首先按照衣藻细胞核密码子偏好性改造并合成EGF基因,成功构建pSP108-EGF双元表达载体,采用玻璃珠法转化、博来霉素抗性筛选,经PCR、Southern blot、ELISA检测转化情况。结果表明:试验获得3株阳性衣藻,EGF和ble基因均已成功整合进入核基因组,其中EGF基因均以单拷贝形式存在并且整合在衣藻核基因组的不同位点,3株阳性衣藻中表达的EGF蛋白浓度分别为19.4 pg/mL、17.1 pg/mL、19.7pg/mL。(3)探究玻璃珠法转化线性质粒。进行pSP108质粒单酶切试验制备线性质粒,采用玻璃珠法转化,经博来霉素抗性筛选、PCR及RT-PCR检测转化情况,对转化条件进行优化。结果表明:经BamHⅠ、XbaⅠ、EcoRⅠ、SacⅠ单酶切制备的pSP108线性质粒均能成功转化,其中BamHⅠ单酶切的线性质粒转化率最高,ble基因成功整合进入莱茵衣藻核基因组,并且在转录水平表达。优化得到玻璃珠法转化线性质粒的条件:采用对数生长中期的衣藻,最佳质粒用量为4μg,最佳涡旋振荡时间为25s,最适博来霉素筛选浓度为15μg/mL。(4)研究线性质粒的共转化。首先按照衣藻细胞核的密码子偏好性改造并合成C反应蛋白基因(CRP),成功构建pCRP载体,采用BamHⅠ单酶切制备pCRP、pSP108线性质粒,玻璃珠法进行转化,通过15μg/mL博来霉素抗性筛选。提取衣藻转化子的DNA,经PCR检测,结果表明ble及CRP基因均已成功整合进入衣藻核基因组之中,经RT-PCR检测,结果表明仅ble基因在转录水平表达,CRP基因可能出现了“基因沉默”现象。

论文目录

  • 摘要
  • abstract
  • 1 绪论
  •   1.1 莱茵衣藻简介
  •   1.2 莱茵衣藻细胞核转化体系
  •     1.2.1 莱茵衣藻细胞核转化机理
  •     1.2.2 莱茵衣藻细胞核转化技术
  •     1.2.3 转基因衣藻的筛选
  •     1.2.4 莱茵衣藻细胞核转化的主要影响因素
  •   1.3 莱茵衣藻细胞核转化体系的应用
  •     1.3.1 药用蛋白的表达
  •     1.3.2 功能蛋白的表达
  •     1.3.3 功能酶的表达
  •   1.4 本课题表达的外源蛋白
  •     1.4.1 人表皮生长因子(EGF)蛋白
  •     1.4.2 C反应蛋白(CRP)
  •   1.5 立题背景和意义
  •   1.6 主要研究内容及技术路线
  •     1.6.1 主要研究内容
  •     1.6.2 技术路线
  • 2 莱茵衣藻细胞核转化体系的构建
  •   2.1 材料和仪器
  •     2.1.1 试验材料及培养条件
  •     2.1.2 试验仪器
  •     2.1.3 试验试剂
  •     2.1.4 培养基
  •     2.1.5 引物设计
  •   2.2 试验方法
  •     2.2.1 pSP108质粒的提取
  •     2.2.2 pSP108质粒的鉴定
  •     2.2.3 莱茵衣藻生长曲线的测定
  •     2.2.4 玻璃珠法转化条件探究
  •     2.2.5 莱茵衣藻转化子筛选
  •     2.2.6 衣藻转化子DNA的提取
  •     2.2.7 衣藻转化子的PCR检测
  •     2.2.8 衣藻转化子的RT-PCR检测
  •   2.3 结果与讨论
  •     2.3.1 pSP108质粒的提取
  •     2.3.2 pSP108质粒的鉴定
  •     2.3.3 玻璃珠法转化条件的确定
  •     2.3.4 衣藻转化子的博来霉素最适筛选浓度
  •     2.3.5 衣藻转化子的PCR检测
  •     2.3.6 衣藻转化子的RT-PCR检测
  •   2.4 本章小结
  • 3 人表皮生长因子(EGF)基因的转化与表达
  •   3.1 材料及仪器
  •     3.1.1 试验材料
  •     3.1.2 试验仪器
  •     3.1.3 试验试剂
  •     3.1.4 引物设计
  •   3.2 试验方法
  •     3.2.1 EGF基因的克隆
  •     3.2.2 pSP108-EGF双元表达载体的构建
  •     3.2.3 玻璃珠法转化p SP108-EGF载体
  •     3.2.4 衣藻转化子的筛选及DNA提取
  •     3.2.5 衣藻转化子的PCR检测
  •     3.2.6 衣藻转化子的Southern blot检测
  •     3.2.7 衣藻转化子的ELISA检测
  •   3.3 结果与分析
  •     3.3.1 pSP108-EGF双元载体的鉴定
  •     3.3.2 衣藻转化子的PCR检测
  •     3.3.3 衣藻转化子的Southern blot检测
  •     3.3.4 EGF蛋白含量测定
  •   3.4 本章小结
  • 4 莱茵衣藻玻璃珠法转化线性质粒
  •   4.1 材料及仪器
  •     4.1.1 试验材料
  •     4.1.2 试验仪器
  •     4.1.3 试验试剂
  •   4.2 试验方法
  •     4.2.1 pSP108质粒的提取
  •     4.2.2 单酶切制备线性质粒
  •     4.2.3 玻璃珠法转化线性质粒
  •     4.2.4 衣藻转化子的筛选及DNA提取
  •     4.2.5 衣藻转化子的PCR检测
  •     4.2.6 衣藻转化子的RT-PCR检测
  •     4.2.7 玻璃珠法转化线性质粒条件优化
  •   4.3 结果与分析
  •     4.3.1 线性质粒的转化结果分析
  •     4.3.2 单酶切试验结果及PCR检测
  •     4.3.3 衣藻转化子的RT-PCR检测
  •     4.3.4 玻璃珠法转化线性质粒条件优化
  •   4.4 本章小结
  • 5 C反应蛋白(CRP)基因的转化与表达
  •   5.1 材料及仪器
  •     5.1.1 试验材料
  •     5.1.2 试验试剂
  •     5.1.3 试验仪器
  •     5.1.4 引物设计
  •   5.2 试验方法
  •     5.2.1 CRP基因的克隆
  •     5.2.2 表达载体p CRP的构建
  •     5.2.3 线性质粒的制备
  •     5.2.4 玻璃珠法转化线性质粒
  •     5.2.5 衣藻转化子的筛选及DNA提取
  •     5.2.6 衣藻转化子的PCR检测
  •     5.2.7 衣藻转化子的RT-PCR检测
  •   5.3 结果与分析
  •     5.3.1 pCRP质粒的提取
  •     5.3.2 pCRP质粒的鉴定
  •     5.3.3 衣藻转化子的筛选
  •     5.3.4 衣藻转化子的PCR检测
  •     5.3.5 衣藻转化子的RT-PCR检测
  •   5.4 本章小结
  • 6 结论与展望
  •   6.1 研究结论
  •   6.2 创新点
  •   6.3 展望
  • 参考文献
  • 攻读学位期间发表的学术论文及研究成果
  • 致谢
  • 文章来源

    类型: 硕士论文

    作者: 黄亚萍

    导师: 王川

    关键词: 莱茵衣藻,细胞核转化体系,玻璃珠法,线性质粒,人表皮生长因子,反应蛋白

    来源: 四川轻化工大学

    年度: 2019

    分类: 基础科学

    专业: 生物学,生物学

    单位: 四川轻化工大学

    分类号: Q943.2

    DOI: 10.27703/d.cnki.gsclg.2019.000015

    总页数: 77

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