导读:本文包含了玫瑰微球菌论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:球菌,海藻,玫瑰色,玫瑰,酵母,糖水,麦芽。
玫瑰微球菌论文文献综述
邓振山,占鹏,张袭[1]（2019）在《玫瑰色微球菌A-04的红色素鉴定及稳定性分析》一文中研究指出从石油污染的土壤和水样中筛选出一株玫瑰色微球菌A-04 Micrococcus roseus,对其所产红色色素进行了分离,并初步鉴定了色素种类,基于对影响A-04色素稳定性的单因素分析基础之上,采用3因素3水平响应面分析法,进一步对影响色素稳定性的主要因素进行了优化分析。结果表明A-04所产红色色素为类胡萝卜素,对该菌株的色素稳定性的单因素条件分析,色素对环境条件的耐受性较好,在80℃、pH5. 0～8. 0等条件下依然能长时间保持鲜红而不褪色。经响应面优化分析表明:温度、pH和溶剂是影响该色素稳定性的主要因素,温度与溶剂的交互作用对色素稳定性的影响也较为明显。pH5. 0～8. 0之间时,在80℃范围内,温度越低,同时溶剂的极性越大,越有利于维持色素的稳定性。本研究结果为该色素的实际开发和应用奠定了基础。(本文来源于《天然产物研究与开发》期刊2019年02期）
周明辉,荚荣[2]（2015）在《聚乙烯醇与海藻酸钠对玫瑰色微球菌的固定化及其脱氮性能的优化》一文中研究指出为了提高玫瑰色微球菌(Rosy Micrococcus)的脱氮效果,利用聚乙烯醇(polyvinyl alcohol,PVA)、海藻酸钠(sodium alginate,SA)以及PVA+SA复合物对其进行固定包埋。应用正交与均匀设计法对固定化小球进行脱氮优化。结果表明,单独利用PVA与SA进行固定脱氮时,脱氮率最高分别达到29%与25%,而利用PVA+SA进行复合固定时,成球性能与脱氮率均优于单因子固定。复合固定脱氮的最优条件为:PVA 7.2%,SA 3%,Ca Cl23%,温度31℃,p H 7.2,胶菌比15%,小球数300个,脱氮时间48 h后脱氮率最高,达到48.9%。(本文来源于《环境工程学报》期刊2015年11期）
周明辉,荚荣[3]（2015）在《Plackett-Burman Design与均匀设计法优化玫瑰色微球菌固定化脱氮的性能》一文中研究指出【目的】采用Plackett-Burman Design(PBD)与均匀设计(Uniform Design,UD)优化玫瑰色微球菌(Micrococcus roseus)固定化脱氮的条件,以提高其脱氮性能。【方法】选择聚乙烯醇(Polyvinyl alcohol,PVA)与海藻酸钠(Sodium alginate,SA)作为固定化细胞材料,研究其成球方式与性能,应用PBD对9个影响脱氮效果的因素进行显着性检验,筛选出PVA、SA、温度、菌液接种量、菌球量5个显着性因素(P<0.05)。采用UD对5个显着因素进行条件优化,优化数据通过Minitab与Matlab软件进行逐步回归分析,并建立二阶多项式模型。【结果】最优脱氮条件为PVA 9.6%、SA 2.2%、温度33.4°C、菌液接种量8%、菌球量500个/100 m L,连续脱氮72 h,最高脱氮率达到60.9%。【结论】PBD与UD的联合使用能够在显着因子筛选与寻优中发挥重要的作用。连续脱氮试验表明,玫瑰色微球菌去除氨氮主要通过同化、硝化与反硝化途径。(本文来源于《微生物学通报》期刊2015年09期）
周明辉,荚荣[4]（2014）在《玫瑰色微球菌的生物学特性及其培养基的优化》一文中研究指出对本实验室分离纯化的玫瑰色微球菌(Micrococcus roseus)M1进行生物学特性研究,包括形态与培养特征的观察,细胞色素的测定,菌体对碳氮源和生长因子的利用,以及该菌株的最适生长条件。通过单因素试验,获得菌株最适生长条件为:培养温度30℃、p H7.5、振荡频率120 r/min、盐度0.5%。采用均匀设计法优化菌株M1的培养基,得到最优培养基(g.L-1):CH3COONa 6;NH4Cl 2.4;Na HCO30.1;Mg SO40.1;维生素溶液12 m L/L;微量元素溶液1 m L/L。在最适生长条件下,接种菌株M1于最优培养基,培养72 h后,菌体和类胡萝卜素的OD值分别达到2.753和4.733,而在基础培养基上的生物量和类胡萝卜素的OD值为1.895和3.258,分别提高了45%和50%。(本文来源于《激光生物学报》期刊2014年05期）
杨蕾蕾,袁其朋,李文进,孙新晓[5]（2009）在《玫瑰微球菌中treZ基因在毕赤酵母中的表达研究》一文中研究指出首次将玫瑰微球菌中麦芽寡糖基海藻糖水解酶(MTHase)treZ基因序列连接到表达载体pPICZαA中,通过电转化法将构建好的表达载体分别转入巴斯德毕赤酵母GS115和KM71菌株中。利用含有Zeocin的YPD平板筛选到阳性转化子,并经PCR、SDS-PAGE电泳以及Western blot最终验证海藻糖水解酶基因treZ已经整合到巴斯德毕赤酵母的基因组上,并且得到了预期的表达。(本文来源于《生物技术通报》期刊2009年10期）
杨蕾蕾[6]（2009）在《玫瑰微球菌麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在毕赤酵母中的表达》一文中研究指出海藻糖因其独特的生物学功能近年来被广泛地应用于细胞、组织器官、食品、化妆品和药物制剂、保藏等领域。由麦芽寡糖基海藻糖合成酶(maltooligosyl trehalose synthase,MTSase)和麦芽寡糖基海藻糖水解酶(maltooligosyl trehalose trehalohy-drolase,MTHase)组成的双酶体系可以将淀粉转化成海藻糖,可望成为工业生产海藻糖的新途径。本文主要构建了来源于玫瑰微球菌的MTHase蛋白的pPICZAα重组表达载体,在巴斯德毕赤酵母表达体系中进行了分泌表达研究。首先根据TreZ基因序列设计引物,以玫瑰微球菌基因组为模板,扩增得到1.9Kb目的基因片段。与T载体连接后转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,筛选阳性转化子进行菌落PCR及测序验证,序列测定结果与报道完全一致。目的片段经EcoRI和XbaⅠ双酶切处理后定向插入pPICZαA质粒中,成功构建了MTHase的分泌表达载体pPICZαA-MTH。重组质粒经线性化分别电转化导入Pichia pastoris GS115及KM71菌株中,通过Zeocin浓度梯度筛选高拷贝重组菌株,最终在1000μg/ml的浓度下得到若干个单菌落。对得到的GS115菌株进行表型验证,证明均为Mut~+。通过测定重组GS115(pPICZαA-MTH)及KM71(pPICZαA-MTH)菌株在BMGY培养基中生长曲线,以及BMMY诱导培养基中总蛋白含量随时间的变化曲线,确定的最佳转接时间分别为20h和25h,甲醇诱导时间为72h。SDS-PAGE结果显示,经0.5%甲醇28℃下诱导72h后,KM71(pPICZαA-MTH)菌株发酵液样品约72.5KD处出现明显条带,而GS115(PICZAα-MTH)菌株没有预期条带。KM71(pPICZαA-MTH)菌株样品western blot出现单一条带,GS115(pPICZαA-MTH)未出现条带,进一步证明MTHase蛋白在KM71菌株中成功表达,而在GS115菌株中未表达。对GS115(pPICZαA-MTH)菌株不表达原因进行分析。通过RT-PCR证明目的基因在GS115中成功转录,应该是翻译水上的原因导致基因沉默。(本文来源于《北京化工大学》期刊2009-06-01）
赵德军,张碧霞,曹雁,毛跃,杨围[7]（2007）在《血中检出多药耐药玫瑰微球菌1例》一文中研究指出微球菌属主要存在于自然环境及人类皮肤与呼吸道中,是一种条件致病菌。2005年7月,我室从1例持续发热>20 d患儿血液中分离出1株玫瑰微球菌,现报道如下。1临床资料患儿,女,3岁,20 d前因受凉后出现发热(体温39~40℃)、咳嗽、咯痰、流涕等症状,在(本文来源于《中华医院感染学杂志》期刊2007年12期）
许雅琴,袁其朋,李文进[8]（2007）在《来源于玫瑰微球菌的麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在大肠杆菌中的融合表达》一文中研究指出设计引物克隆玫瑰微球菌QS412中麦芽寡糖基海藻糖水解酶(MTHase)的基因treZ,通过与pET-28a(+)载体相连,转化入宿主菌E.coli BL21,进行发酵诱导。通过SDS-PAGE检测到外源基因在大肠杆菌中有很高的MTHase表达量,但大部分都以不溶性包含体形式存在。对菌体超声破碎全菌液检测酶活,结果显示了水解酶酶活。这是来源于微球菌属的麦芽寡糖基海藻糖水解酶首次获得基因克隆和活性表达,为进一步提高酶活、增大海藻糖产量奠定了基础。(本文来源于《生物技术通报》期刊2007年05期）
许雅琴[9]（2007）在《玫瑰微球菌麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在大肠杆菌中的表达》一文中研究指出海藻糖(Trehalose，α-D-glucopyranosyl-α-D-glucopyranoside)是由两个葡萄糖分子经半缩醛羟基结合而成的非还原性双糖，其具有的独特生物学特性可以保护生物大分子抵抗不良的环境压力。近十年来，其广泛的应用前景引起了各国科学家对其研究的极大兴趣。本实验室前人已克隆了玫瑰微球菌QS412中产海藻糖相关酶体系基因。本文主要致力于采用基因工程的手段，构建基因工程菌，实现麦芽寡糖基海藻糖水解酶(maltooligosyltrehalose trehalohydrolase，MTHase)在大肠杆菌中的表达和酶活性研究。首先设计引物克隆玫瑰微球菌QS412中麦芽寡糖基海藻糖水解酶的基因treZ，插入表达载体pET28a(+)中，构建重组质粒pET-MTH，使得重组菌株E.coli BL21(DE3)(pET-MTH)在LB培养基中，28℃用0.1mmol／LIPTG诱导8h，表达融合蛋白6His-MTHase，外源蛋白表达量占菌体总蛋白的30％。收集发酵液菌体，洗涤破碎，测定破碎全菌液酶活，得每升发酵液所得酶活是44U。载体pET-MTH在E.coli BL(DE3)中表达的His-MTHase融合蛋白绝大部分以包涵体形式存在。温度是影响蛋白表达水平和菌体生长的最主要因素，经过4℃～37℃温度范围，和0.04～1 mmol／L IPTG诱导剂浓度范围进行诱导，发现二者对提高酶活无显着影响，最后确定重组菌的发酵诱导条件为28℃，0.1 mmol／L IPTG，诱导6h。对破碎菌体所得的包涵体，本文进行洗涤、溶解、尝试透析复性，并对复性后蛋白进行酶活检测，但检测不到酶活，可能复性后的空间结构不对。考虑到T7启动子太强导致表达的外源蛋白His-MTHase绝大部分以包涵体形式存在，尝试将treZ基因插入到带弱启动子的载体中。采用了清华大学化工系李强老师自主构建的组成型表达载体，构建了重组质粒pGEMKT-HPf-MTH，转化入大肠杆菌宿主菌中，但没有明显的表达，也检测不到酶活。综上，本文的工作使得来源于玫瑰微球菌QS412麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在大肠杆菌中实现了活性表达，为进一步更换表达载体和宿主菌，实现基因工程菌表达重组蛋白的高酶活奠定了基础。(本文来源于《北京化工大学》期刊2007-06-04）
张欣,袁其朋,蒋利伟,许雅琴[10]（2007）在《固定化玫瑰微球菌发酵产海藻糖合成酶系》一文中研究指出以聚氨酯为载体固定化培养玫瑰微球菌,发酵生产海藻糖合成酶系麦芽糖苷基海藻糖合成酶MTSase和麦芽糖苷基海藻糖水解酶MTHase。考察了细胞固定化对菌体生长及产酶的影响,对固定化细胞重复批次发酵换液条件进行了初探。固定化细胞发酵40 h,酶活达到最大值,产酶周期缩短了56 h,细胞干质量和酶活分别达到12g/L和52 u/mL,比游离细胞发酵提高了12%和33%。重复批次发酵最佳的换液条件为发酵40 h后,以40%的换液量每隔24 h以等量新鲜培养基替换发酵液。在此条件下,重复发酵9批,连续230 h菌体生物量及酶活无明显下降。在10 L发酵罐中进行放大实验,酶活最高达到80 u/mL,重复发酵7批,连续180 h菌体生物量及酶活无明显下降,酶的时空产率达到56.9 u/(L.h),比单批发酵提高了42.5%。(本文来源于《北京化工大学学报(自然科学版)》期刊2007年01期）
玫瑰微球菌论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
为了提高玫瑰色微球菌(Rosy Micrococcus)的脱氮效果,利用聚乙烯醇(polyvinyl alcohol,PVA)、海藻酸钠(sodium alginate,SA)以及PVA+SA复合物对其进行固定包埋。应用正交与均匀设计法对固定化小球进行脱氮优化。结果表明,单独利用PVA与SA进行固定脱氮时,脱氮率最高分别达到29%与25%,而利用PVA+SA进行复合固定时,成球性能与脱氮率均优于单因子固定。复合固定脱氮的最优条件为:PVA 7.2%,SA 3%,Ca Cl23%,温度31℃,p H 7.2,胶菌比15%,小球数300个,脱氮时间48 h后脱氮率最高,达到48.9%。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
玫瑰微球菌论文参考文献
[1].邓振山,占鹏,张袭.玫瑰色微球菌A-04的红色素鉴定及稳定性分析[J].天然产物研究与开发.2019
[2].周明辉,荚荣.聚乙烯醇与海藻酸钠对玫瑰色微球菌的固定化及其脱氮性能的优化[J].环境工程学报.2015
[3].周明辉,荚荣.Plackett-BurmanDesign与均匀设计法优化玫瑰色微球菌固定化脱氮的性能[J].微生物学通报.2015
[4].周明辉,荚荣.玫瑰色微球菌的生物学特性及其培养基的优化[J].激光生物学报.2014
[5].杨蕾蕾,袁其朋,李文进,孙新晓.玫瑰微球菌中treZ基因在毕赤酵母中的表达研究[J].生物技术通报.2009
[6].杨蕾蕾.玫瑰微球菌麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在毕赤酵母中的表达[D].北京化工大学.2009
[7].赵德军,张碧霞,曹雁,毛跃,杨围.血中检出多药耐药玫瑰微球菌1例[J].中华医院感染学杂志.2007
[8].许雅琴,袁其朋,李文进.来源于玫瑰微球菌的麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在大肠杆菌中的融合表达[J].生物技术通报.2007
[9].许雅琴.玫瑰微球菌麦芽寡糖基海藻糖水解酶基因在大肠杆菌中的表达[D].北京化工大学.2007
[10].张欣,袁其朋,蒋利伟,许雅琴.固定化玫瑰微球菌发酵产海藻糖合成酶系[J].北京化工大学学报(自然科学版).2007
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