特异阻滞剂论文_马健会,李晖

导读:本文包含了特异阻滞剂论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:阻滞剂,门控,通道,毒性,毒素,电压,毛细。

特异阻滞剂论文文献综述

马健会,李晖^[1]（2006）在《μ-芋螺毒素——高特异性钠通道阻滞剂》一文中研究指出μ-芋螺毒素是一类具有独特药理活性的海洋生物毒素,至今共发现有7种,均为16～22个氨基酸大小的小肽,其分子内部形成3对二硫键。它们高度特异性地阻断电压门控Na+通道,甚至能够区分Na+通道的不同亚型。最近发现的两种μ-芋螺毒素的特异性更强,可以选择性地作用于TTX-R型Na+通道,而对TTX-S型Na+通道几乎无任何影响,这种作用的特点对于研究Na+通道亚型及新药开发具有重要价值。(本文来源于《生命的化学》期刊2006年06期）

邓悦^[2]（2003）在《iNOS特异阻滞剂EIT对细菌内毒素所致的体外培养大鼠Corti器损害的保护作用》一文中研究指出前言细菌内毒素Lipopolysaccharide(LPS)是革兰氏阴性菌细胞壁的成分，又称脂多糖，它可以刺激巨噬细胞产生细胞因子，自由基，脂类等物质，少量上述物质可激活免疫系统，杀病原微生物，大量时可产生细胞毒性，目前很多研究将LPS作为诱导NO生成的常规物质，我们在实验中加入LPS，观察其对内耳器官的毒害作用。目前内耳疾病病因不明，且尚无有效的治疗药物。有些学者认为：NO过量或不足均可以产生以急性或渐进性耳鸣，眩晕，听力减退为特征的各种内耳疾病。为此我们用LPS诱发培养器官合成NO，在体外培养的器官内构建了NO/NOS介导的内耳耳毒性模型，我们用诱导型一氧化氮合酶(inducible isoform of nitric oxide synthase iNOS)特异阻滞剂S-Ethylisothiourea(EIT)加以保护。实验结果提示：iNOS特异阻滞EIT具有高效拮抗LPS所致的内耳毒性作用实验材料 1．取材与分组：取新生3天的Wistar大鼠30只随机分组第一组：正常对照组第二组：只给50ug/ml LPS组第叁组：只给200ug/ml LPS组第四组：只给100nM EIT组第五组：给200ug/ml LPS+100nM EIT组 2．主要试剂及仪器：内耳器官培养液、EIT、LPS(均购自Sigma公司)，内耳器官培养设备、显微图像采集系统。实验方法将新生3天的Wistar大鼠，断头，取出听泡，将听泡置于Hanks液中，取出耳蜗，去除血管纹，螺旋韧带，前庭膜获得全耳蜗的基底膜，放人培养液或合处理因素的培养液中培养48h后，用4％多聚甲醛4t下固定4 ／J’时，再用PBS和溶于PBS的1％Titon－Xll漂洗3次，用 PHAuONDIN－TRITC荧光染色剂染色30分钟，后行全基底膜铺片，在荧光显微镜下，观察内毛细胞，外毛细胞，所有实验数据以均值上标准差＊。S）表示，用1检验，进行统计学分析。实验结果正常培养48／J’时的内政十毛细胞均无损伤；在含100nM EIT的培养液中培养兆h后，内产毛细胞几无损伤；在含soUg／Mlls的培养液中培养48h后，内政毛细胞有轻微损伤；在含200fig／mlLPS的培养液中培养48h后，内、外毛细胞有中重度损伤；在含200ug／Inl LPS＋100nM EIT的培养液中培养48h后，内政毛细胞的损伤均减弱，后两者具有显着性差异h＜0刀1人讨论 LPS是革兰氏阴性细菌细胞壁的成分，很多研究将LPS作为诱导iNOS合成的常规物质，NO／NOS是影响内耳的生理、病理功能的重要因素，我们在实验中发现，在含 50fig／ml IyS培养液中培养48h后，内毛细胞和外毛细胞有轻微损伤，单独使用EN，由于只抑制i NOS诱导生成大量有损害功能的 NO，而不抑制由 CNOS ·2·合成的少量NO对内产毛细胞所起的正常生理作用，所以对内毛细胞，外毛细胞没有副损伤，在含 LPS＋EIT的培养液，培养48h的内J毛细胞，基本恢复正常状态，是因为EIT是一种iNOS特异性阻滞剂，可特异阻滞iNOS诱导产生的NO引起的内J毛细胞的损伤，提示：EIT具有桔抗LPS所致的内耳损伤的功能。结论 EIT对LPS所致的体外培养的内政毛细胞的损伤，具有保护作用。(本文来源于《中国医科大学》期刊2003-03-01）

特异阻滞剂论文开题报告

（1）论文研究背景及目的

此处内容要求：

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例：

前言细菌内毒素Lipopolysaccharide(LPS)是革兰氏阴性菌细胞壁的成分，又称脂多糖，它可以刺激巨噬细胞产生细胞因子，自由基，脂类等物质，少量上述物质可激活免疫系统，杀病原微生物，大量时可产生细胞毒性，目前很多研究将LPS作为诱导NO生成的常规物质，我们在实验中加入LPS，观察其对内耳器官的毒害作用。目前内耳疾病病因不明，且尚无有效的治疗药物。有些学者认为：NO过量或不足均可以产生以急性或渐进性耳鸣，眩晕，听力减退为特征的各种内耳疾病。为此我们用LPS诱发培养器官合成NO，在体外培养的器官内构建了NO/NOS介导的内耳耳毒性模型，我们用诱导型一氧化氮合酶(inducible isoform of nitric oxide synthase iNOS)特异阻滞剂S-Ethylisothiourea(EIT)加以保护。实验结果提示：iNOS特异阻滞EIT具有高效拮抗LPS所致的内耳毒性作用实验材料 1．取材与分组：取新生3天的Wistar大鼠30只随机分组第一组：正常对照组第二组：只给50ug/ml LPS组第叁组：只给200ug/ml LPS组第四组：只给100nM EIT组第五组：给200ug/ml LPS+100nM EIT组 2．主要试剂及仪器：内耳器官培养液、EIT、LPS(均购自Sigma公司)，内耳器官培养设备、显微图像采集系统。实验方法将新生3天的Wistar大鼠，断头，取出听泡，将听泡置于Hanks液中，取出耳蜗，去除血管纹，螺旋韧带，前庭膜获得全耳蜗的基底膜，放人培养液或合处理因素的培养液中培养48h后，用4％多聚甲醛4t下固定4 ／J’时，再用PBS和溶于PBS的1％Titon－Xll漂洗3次，用 PHAuONDIN－TRITC荧光染色剂染色30分钟，后行全基底膜铺片，在荧光显微镜下，观察内毛细胞，外毛细胞，所有实验数据以均值上标准差＊。S）表示，用1检验，进行统计学分析。实验结果正常培养48／J’时的内政十毛细胞均无损伤；在含100nM EIT的培养液中培养兆h后，内产毛细胞几无损伤；在含soUg／Mlls的培养液中培养48h后，内政毛细胞有轻微损伤；在含200fig／mlLPS的培养液中培养48h后，内、外毛细胞有中重度损伤；在含200ug／Inl LPS＋100nM EIT的培养液中培养48h后，内政毛细胞的损伤均减弱，后两者具有显着性差异h＜0刀1人讨论 LPS是革兰氏阴性细菌细胞壁的成分，很多研究将LPS作为诱导iNOS合成的常规物质，NO／NOS是影响内耳的生理、病理功能的重要因素，我们在实验中发现，在含 50fig／ml IyS培养液中培养48h后，内毛细胞和外毛细胞有轻微损伤，单独使用EN，由于只抑制i NOS诱导生成大量有损害功能的 NO，而不抑制由 CNOS ·2·合成的少量NO对内产毛细胞所起的正常生理作用，所以对内毛细胞，外毛细胞没有副损伤，在含 LPS＋EIT的培养液，培养48h的内J毛细胞，基本恢复正常状态，是因为EIT是一种iNOS特异性阻滞剂，可特异阻滞iNOS诱导产生的NO引起的内J毛细胞的损伤，提示：EIT具有桔抗LPS所致的内耳损伤的功能。结论 EIT对LPS所致的体外培养的内政毛细胞的损伤，具有保护作用。

（2）本文研究方法

调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。