鸭流感的免疫动态研究

鸭流感的免疫动态研究

黄得纯[1]2004年在《鸭流感的免疫动态研究》文中研究说明本研究用不同剂量禽流感H_5N_1油乳剂灭活疫苗、禽流感H_9N_2油乳剂灭活疫苗、禽流感H_5N_1-H_9N_2二联油乳剂灭活疫苗,对各种周龄肉鸭、种鸭进行免疫接种,检测其相应的HI抗体水平,用酸性α-醋酸萘酯酶(ANAE)反应标记淋巴细胞的细胞化学方法测定其外周血中T、B淋巴细胞比值。探索肉、种鸭体液免疫和细胞免疫动态规律,为免疫防制禽流感制定最佳免疫程序提供科学依据。同时每周进行体重测定,了解免疫接种禽流感灭活疫苗对肉鸭的生长影响。研究结果表明: 1.使用H_5N_1灭活疫苗,H_9N_2灭活疫苗,H_5N_1-H_9N_2二联苗免疫接种小鸭,1周龄免疫接种效果不良,2、3周龄二次免疫效果优于2周龄一次免疫,用H_5N_1-H_9N_2二联苗免疫肉鸭是可行的。 2.种鸭对禽流感免疫应答反应良好,雏鸭H_5N_1母源抗体在出雏后3日龄达到峰值,5日龄开始下降,直至19日龄消失 3.免疫接种H_5N_1灭活疫苗或H_9N_2灭活疫苗或H_5N_1-H_9N_2二联苗对肉鸭生长没有明显影响。

王梅[2]2013年在《四川省养鸭场鸭流感免疫程序调查及抗体水平监测》文中认为鸭流感是人禽共患的A类传染病,传播速度快,发病率和死亡率高,可感染人,威胁人类健康。鸭被认为是禽流感病毒的巨大储存库,在禽流感病毒由野生水禽传播到陆生禽类的过程中充当了中间媒介作用。中国的养鸭量占世界养鸭量的比重最大,而四川是全国最大的养鸭省份,且处于候鸟全球两条主要迁徙路线上。对四川鸭流感抗体水平监测具有重要意义。鸭流感防控中,疫苗免疫室关键措施之一,对鸭流感的免疫研究虽有较多进展,但生产上无明确统一的免疫程序;生产禽流感疫苗厂家较多;首免日龄、免疫次数没有明确的标准。本试验意在对四川地区养殖场鸭流感免疫程序调查和抗体水平监测,为鸭流感免疫程序的完善提供资料,有效防控四川地区鸭的禽流感。本试验对四川省四川中部的成都、北部的德阳和绵阳、东部的遂宁、南部的眉山和乐山、西部的雅安五个地区的部分养鸭场鸭流感免疫程序调查,采用血凝抑制试验测定抗体水平,调查并比较不同厂家疫苗、不同首免日龄、不同免疫次数下的鸭流感抗体效价和免疫合格率。结果:种鸭流感平均抗体滴度7.0log2,合格率93.7%。商品鸭流感平均抗体滴度4.0log2,合格率59.4%。首免日龄1-6d的商品鸭,抗体滴度2.8log2,合格率38.0%,7日龄后免疫的商品鸭,抗体滴度无明显差异,均能达到有效保护作用。种鸭首免日龄均在7d及其以上,合格率78.3%-100.0%,抗体效价5.5~8.3log2。种鸭首免日龄均在7d及其以上,免疫效果较好,合格率在78.3%-100.0%之间,抗体效价在5.5-8.3log2之间。其中7-8d免疫效果最高,其次是9-10日龄。商品鸭0次免疫的抗体效价低于1.7log2,合格率低于24%;一次免疫抗体效价4.1~5.1log2,合格率64.2-66.7%,二次免疫抗体效价7.4log2,合格率97.4%。四川养鸭场所用的疫苗有9家,免疫后抗体效价和合格率排名前4的均为A、B、D、I。54家养殖场中,免疫H5疫苗的45家,免疫H9疫苗的25家,H9疫苗的免疫密度明显低于H5。种鸭免疫效果优于商品鸭,H5的免疫密度高于H9。种鸭与商品鸭的最佳首免日龄为7-10日龄。商品鸭出栏日龄小于40天,适宜1次免疫,出栏日龄大于40天,适宜2次免疫;种鸭免疫次数应为2次及2次以上。调查的9家禽流感疫苗生产厂中,8家合格,1家不合格。

陈炳中[3]2013年在《旱养模式鸭流感灭活疫苗的免疫试验》文中认为禽流行性感冒,简称禽流感(HI),是由正黏病毒科流感病毒属的A型流感病毒(AIV)引起的一种禽类的全身性感染或呼吸系统综合征,各种家禽和野禽均可感染。流感病毒本来对水禽只是隐性感染而不致病,但随着病毒的变异,也能致水禽发病并且死亡。目前,国内养鸭行业悄然经历从传统水浴模式向旱养模式转变的阶段。旱养模式与传统水浴模式在饲养环境、饲料营养、疫病防控方案等方面存在较大不同,可能影响鸭的禽流感免疫程序。本试验对旱养鸭禽流感母源抗体和免疫抗体动态变化进行监测,对种鸭抗体与商品鸭母源抗体关系进行探索,对不同类型的禽流感疫苗免疫效果进行对比,对肉鸭的免疫器官发育规律与禽流感抗体水平的关系进行探究,试验结果:1、肉种鸭禽流感免疫程序,即15日龄用0.5mlH5N1颈部皮下首免,49日龄用1.0ml二价苗(H5N1+H9N2)肌肉二免,148日龄和316日龄均用1.5ml二价苗(H5N1+H9N2)肌肉叁免和四免,为经济、实用的免疫程序。商品代肉鸭禽流感免疫程序,即在9日龄用0.5mlH5N1颈部皮下一次性免疫,免疫7天后即可产生有效抗体保护,直至上市42日龄,抗体效价仍然处在抗体保护临界之上,但建议需检测母源抗体效价再推算免疫日龄。2、对比不同H5N1疫苗免疫肉鸭的免疫效果,结果:使用重组禽流感病毒灭活疫苗(H5N1re-6株)与重组禽流感病毒H5亚型二价灭活疫苗(H5N1re-4株+re-6株)免疫肉鸭都可行,但不适于使用禽流感二价灭活疫苗(H5N1re-6株+H9N2re-2株)。3、通过已知血清抗体的种鸭与其商品代雏鸭母源抗体的监测得出:种鸭禽流感血清抗体在4-10log2区间与抗体损耗呈类线性反比关系。4、通过对禽流感免疫鸭与非免疫鸭的免疫器官的发育进行监测,得出:旱养肉鸭胸腺指数从1-28日龄均在增长,先慢后快,而28日龄后下降,脾脏指数与法氏囊指数则是从出生后即开始下降。禽流感免疫显着地刺激了鸭机体的免疫器官发育。本试验制定了较合理的旱养模式下鸭禽流感灭活疫苗的免疫程序。

黄得纯, 陈建红, 薛立群, 杨承忠, 林丽超[4]2005年在《鸭免疫H5N1亚型禽流感油乳剂灭活苗的免疫动态研究》文中进行了进一步梳理本研究用不同剂量禽流感H5N1油乳剂灭活疫苗对各种周龄肉鸭、种鸭进行免疫接种,检测其相应的HI抗体水平,用酸性α-醋酸萘酯酶(ANAE)反应标记淋巴细胞的细胞化学方法测定其外周血中T、B淋巴细胞比值。探索肉、种鸭体液免疫和细胞免疫动态规律,为免疫防制禽流感制定最佳免疫程序提供科学依据。研究结果表明:免疫接种小鸭,1周龄免疫接种效果不良,2、3周龄二次免疫效果优于2周龄一次免疫。种鸭对禽流感免疫应答反应良好;雏鸭H5N1 母源抗体在出雏后3日龄达到峰值,5日龄开始下降,直至19日龄消失。

蔡羲[5]2010年在《番鸭呼肠孤病毒与H9AIV协同感染对番鸭体液免疫机能的影响》文中研究说明番鸭呼肠孤病毒病和水禽流感病毒病均是我国新出现的水禽疫病,严重影响水禽养殖业的健康发展。为阐明番鸭呼肠孤病毒(MDRV)和水禽流感病毒(H9AIV)导致的免疫抑制机理,本研究测定了MDRV和H9AIV人工感染8日龄番鸭后,番鸭血液和免疫器官淋巴细胞数量、B淋巴细胞比率和增殖功能及其对流感疫苗诱导HI抗体的动态变化,探讨MDRV和H9AIV协同感染对番鸭体液免疫机能的影响。1.应用淋巴细胞分离液分离淋巴细胞,按常规白细胞计数法测定感染后7d和14d淋巴细胞总数和免疫器官指数,结果显示:H9AIV组番鸭血液和体液免疫器官(脾脏和法氏囊)中淋巴单核类细胞数量均不同程度低于健康对照组但差异不显着,MDRV组低于对照组和AIV组,且差异显着,共感染组明显低于单一感染组。H9AIV组免疫器官(脾脏和法氏囊)指数与对照组差异不显着,而MDRV组和共感染组表现为法氏囊萎缩,法氏囊器官指数降低,但脾脏肿大坏死,脾脏指数均较对照组和AIV组高。表明H9AIV感染不影响番鸭免疫器官的发育,也基本不影响血液和免疫器官中淋巴单核类细胞数量;但MDRV感染不仅严重损伤免疫器官,而且使番鸭血液和免疫器官中淋巴单核类细胞数量明显下降。2.应用MTT法测定感染后1、3、5、7、10和14天番鸭血液、脾脏和法氏囊中的B淋巴细胞增殖功能的动态变化。结果显示:8日龄番鸭人工感染后,单一感染组和共感染组番鸭血液、法氏囊和脾脏的B淋巴细胞刺激指数均明显低于健康对照组,其中共感染组又低于单一感染组。表明MDRV和H9AIV均能抑制番鸭外周血液及体液免疫器官(法氏囊、脾脏)中B淋巴细胞增殖功能,二者协同感染加重免疫抑制程度。3.应用流式细胞术测定感染后1d、4d、7d、11d、14d、21d和30d番鸭血液B淋巴细胞比率,分析MDRV和H9AIV感染对番鸭血液B淋巴细胞数量的影响。结果显示:8日龄番鸭人工感染后,各感染组番鸭血液中B淋巴细胞比率均明显低于健康对照组,其中共感染组又低于单一感染组。表明MDRV和H9AIV均能降低血液B淋巴细胞数量,二者协同感染导致B细胞数量进一步降低。4.应用微量血球凝集抑制(HI)试验测定了不同感染方式番鸭免疫水禽流感疫苗后血清抗AIV抗体水平。结果显示:各感染组番鸭流感疫苗免疫后,在观察期内HI抗体水平明显低于健康对照组,单一感染组(MDRV组和H9AIV组)HI抗体水平与共感染组差异不显者。表明MDRV和H9AIV均能抑制流感疫苗的免疫应答。综上所述,8日龄雏番鸭感染H9AIV后其生长发育、免疫器官指数和淋巴单核类细胞数量基本不受影响,但H9AIV感染能不同程度降低血液B细胞数量和增殖能力,同时降低感染鸭对流感灭活疫苗的HI抗体应答水平。MDRV感染不仅导致番鸭发病死亡,且免疫器官严重受损,番鸭血液和免疫器官中淋巴单核类细胞数量、B细胞比率和增殖功能显着下降。MDRV和H9AIV协同感染具有不同程度的迭加效应。上述研究结果表明,番鸭呼肠孤病毒和H9流感病毒均可导致番鸭体液免疫抑制。

席瑞珍[6]2004年在《鸭源H_5N_1亚型禽流感病毒与鸡源H_5N_1亚型禽流感病毒的生物学特性和分子生物学特性的比较》文中指出本研究在2000年分离到的H5N1亚型禽流感病毒中选择了有代表性的一株鸭源KF株和一株鸡源QS株,从病毒的生物学特性角度和HA基因的分子水平对其致病力、抗原性、免疫原性作了比较和分析,进行了鸡鸭胚的ELD50、鸡鸭LD50、鸡鸭IVPI、同居感染试验、交叉中和试验和攻毒保护试验,结果显示:鸭源KF株对鸡、鸭胚的ELD50分别为10-8.55/0.1mL和10-8.44/0.1mL,大于相应的鸡源QS株对鸡胚(10-7.5/0.1mL)和鸭胚(10-7.375/0.1mL)的ELD50;鸭源KF对鸡、鸭LD50分别为10-8/0.2mL和10-4.25/0.2mL,明显高于相应鸡源QS对鸡(10-6.47/0.2mL)和鸭LD50(10-2.63/0.2mL);对六周龄鸡和鸭的IVPI值KF分别为2.71和2.66,也远高于QS对鸡(2.1)和鸭的IVPI值(1.83);表明鸭源KF株的致病力大于鸡源QS株。但对于同一毒株来说,对鸭胚的ELD50小于鸡胚,对鸭的LD50、IVPI均小于鸡,表明鸭和鸭胚的抵抗力要比鸡和鸡胚大。交叉HI试验,鸡胚中和试验中两毒株的抗原相关系数均在0.67以上,表明两毒株的抗原性相同。由攻毒保护试验显示,两种毒对KF株疫苗的免疫鸡鸭攻毒可达到80%-100%的保护,而QS株却只能达到75%-80%,表明KF株的免疫原性较QS株好,用于制苗效果较好。通过基因克隆的方法获得了两株病毒的HA全长基因(1.7kb),比较KF和QS的核苷酸序列,发现两者相差11个位点,其中QS的906位的G突变为A,引起该处编码氨基酸的变化,使该处变为SSS从而失去一个糖基化位点,这是否和QS株较KF株的致病力小,免疫原性稍差有关尚待研究。两毒株的HA裂解位点序列均为-RDRRRKKR-,是典型的高致病性毒株,其核苷酸与氨基酸序列同源性分别为99.4%和98.4%,说明两毒株是同一来源的病毒在不同宿主的表现。基因进化分析表明这两毒株与ThaiL/04、香港HK/156/97株均处于欧亚谱系,其核苷酸和氨基酸的同源性分别为96.3%-96.7%和95.2%-95.3%,而且具有226位的Met,但不具有感染人毒株所共有的52位(T)、270位(T)和340位的(E),说明两试验株目前虽不感染人,也有感染人的潜在能力。该研究结果从理论上证实了水禽流感,尤其是鸭流感,在自然界中具有重要的生态学地位和流行病学意义,也为实际生产中H5N1亚型鸭流感的免疫和制苗株的选择提供参考依据,从而为禽流感的扑灭和有效防治提供科学的指导。

王红丽[7]2010年在《禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭消化道局部和全身免疫水平的影响》文中提出应用鸭源禽流感H9N2灭活抗原配合黏膜免疫佐剂CpG DNA(以下简称CpG)和葡萄糖饮水免疫,研究鸭消化道局部(主要是咽和小肠)和全身免疫水平的变化。7日龄雏鸭125只随机分为5组。10日龄时,第1组应用0.3 ml生理盐水饮水;第2组应用0.3 m1鸭源禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫;第3组应用0.3 ml鸭源禽流感H9N2灭活抗原配合葡萄糖饮水免疫;第4组应用0.3 ml鸭源禽流感H9N2灭活抗原配合CpG饮水免疫;第5组应用0.3 ml鸭源禽流感H9N2灭活抗原配合CpG和葡萄糖饮水免疫。14日龄时再进行二次免疫。首次免疫后第3、5、7周宰杀动物并取材。首先,通过检测消化道中上皮内淋巴细胞(IEL)、肥大细胞数量和小肠黏膜细胞因子IL-2和IL-6水平来探讨禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫对鸭消化道局部细胞免疫的影响;通过检测消化道IgA和IgG分泌细胞数量及特异性抗体水平来探讨禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫对消化道局部体液免疫的影响;然后,通过检测血清中特异性IgA和IgG抗体及禽流感HI抗体水平来探讨禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫对全身免疫水平的影响;最后,通过攻毒试验来验证禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫后,鸭群对H9N2病毒攻击的抵抗力及免疫对鸭从粪便中排出病毒的影响;通过混合感染试验来探讨禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫对混合感染的影响。结果如下:1.鸭IgA和IgG的提纯和兔抗鸭IgA和IgG高免血清的制备本试验首先从胆汁和血清中分别提纯鸭的IgA和IgG,然后通过Sephadex G200凝胶过滤和DEAE-SephadexA-52纤维素柱;最后经SDS-PAGE电泳鉴定结果显示,IgA and IgG的重链分子量分别为70000~72000和67000。轻链分子量相同,约为26000。纯化的鸭IgA和IgG分别背部皮下接种兔,所得的抗血清经双向琼扩试验测定其效价,证明兔抗鸭IgA和IgG血清中抗体水平均达到1:32。2.禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭消化道局部细胞免疫水平的影响应用HE染色法显示小肠上皮内淋巴细胞,结果发现:应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫雏鸭后小肠中IEL数量显着增多(P<0.05);单独应用或用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫后IEL数量均无明显变化。应用甲苯胺蓝染色法显示咽和小肠中肥大细胞,结果发现:应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫雏鸭后,咽和小肠中肥大细胞数量显着或极显着增加(P<0.05或P<0.01);而单独应用或用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫后肥大细胞数量均无明显变化。应用放射免疫法测定小肠黏膜中细胞因子IL-2和IL-6的水平,结果发现:应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫鸭在免疫后小肠黏膜中IL-2和IL-6水平均极显着增加(P<0.01);而单独应用或应用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫的鸭IL-2和IL-6水平均无明显变化。以上叁个试验结果表明,禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫可有效诱导鸭消化道局部细胞免疫应答。3.禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭消化道局部体液免疫水平的影响应用SPA-HRP间接染色法显示咽和小肠中IgA和IgG分泌细胞,结果发现:应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫雏鸭后咽和小肠中[gA和IgG分泌细胞面积显着或极显着增加(P<0.05或P<0.01));而单独应用或应用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫后小肠IgA和IgG分泌细胞面积均无明显变化。应用间接ELISA方法检测咽和小肠黏膜部位SIgA和IgG抗体水平,结果表明:应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫后,鸭的咽和小肠中SIgA和IgG抗体水平极显着增加(P<0.01);而单独应用或应用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫的鸭SIgA和IgG抗体水平无明显变化。以上两个试验结果表明,禽流感H9N2灭活抗原配合佐剂饮水免疫可诱导鸭消化道局部体液免疫应答。4.禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭全身免疫水平的影响应用血凝抑制(HI)试验检测血清中禽流感HI抗体水平,结果表明:首免后第3、5、6周,应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫鸭血清中禽流感HI抗体水平显着升高(p<0.05);而单独应用或应用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫的鸭血清中禽流感HI抗体水平无明显变化。应用间接ELISA方法检测血清中禽流感特异性IgA和IgG抗体水平,结果表明:应用CpG或应用CpG和葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫显着提高了血清中禽流感特异性IgA(首免后2至6周)和IgG(首免后3至7周)抗体水平(P<0.05);而单独应用或用葡萄糖配合禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭血清中禽流感特异性IgA和IgG抗体水平无明显变化。以上两个指标提示,禽流感灭活抗原配合佐剂饮水免疫能够在一定程度上诱导全身免疫水平。5.禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭攻毒保护和病毒扩散的影响攻毒试验7日龄鸭30只随机分为3组。第1组应用生理盐水饮水;第2组应用禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫;第3组应用禽流感H9N2灭活抗原配合CpG和葡萄糖饮水免疫。首次免疫后第21天用禽流感H9N2病毒(ELD50为10832/O.1ml)口腔滴注攻击,剂量为每只鸭2ml。攻毒后各组鸭均无临床症状,剖检时也无肉眼可见损伤。病毒分离结果发现:攻毒后第3天,应用生理盐水和单独应用禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫组有部分鸭的样品中分离到禽流感病毒,而未从应用禽流感H9N2灭活抗原配合CpG和葡萄糖饮水免疫鸭体内分离到病毒。结果提示应用禽流感H9N2灭活抗原配合CpG和葡萄糖饮水免疫后,鸭群能够在一定程度上抵抗H9N2病毒的攻击。病毒扩散试验7日龄鸭24只,其中12只雏鸭应用生理盐水饮水,另12只雏鸭应用鸭源禽流感H9N2灭活抗原配合CpG和葡萄糖饮水免疫,首次免疫后第21天分别取6只鸭用禽流感H9N2亚型病毒口腔滴注攻击。攻毒后混合饲养。病毒分离结果显示,分别与未免疫攻毒鸭和免疫后攻毒鸭混合饲养后,未免疫鸭的病毒分离阳性鸭数要高于免疫鸭。结果表明,应用禽流感H9N2灭活抗原配合CpG和葡萄糖饮水免疫后能减少病毒扩散。

苏敬良, 张国中, 黄瑜, 赵继勋[8]2004年在《商品鸭流感疫苗免疫抗体的监测》文中认为高致病力流感 (HPAD)可侵害各种日龄的商品鸭 ,造成严重的死亡和产蛋下降 ,给养鸭业造成巨大的威胁。无母源抗体的雏鸭从 3日龄开始 ,直至出栏均可感染发病。感染鸭群表现明显的精神沉郁、采食下降或不食。感染鸭有明显的神经症状 ,出现头颈扭曲、抽搐 ,严

杨金保, 张琳, 李兆华, 李禹涛, 吴媛媛[9]2017年在《人参茎叶皂甙对鸭禽流感疫苗的免疫增强作用和抗氧化功能的影响》文中研究表明为探讨人参茎叶皂甙(GSLS)对鸭流感疫苗的免疫增强作用和抗氧化功能的影响,给鸭群饮水口服GSLS,同时接种禽流感疫苗,通过检测血清抗AIV特异性HI效价、免疫器官指数、淋巴细胞增殖转化指数、细胞因子和肠黏膜SIg A水平,评价GSLS的免疫增强作用;通过测定血清丙二醛(MDA)和超氧化物歧化酶(SOD)含量,评价GSLS对机体抗氧化功能的影响。结果表明:在28和35日龄时,饮水口服中剂量GSLS组鸭血清抗AIV特异性HI效价显着高于对照组(P<0.05),与1份疫苗组相比,免疫后2、3、4周,饮水口服GSLS能诱导机体对0.75份疫苗抗原产生的HI效价提高,但是差异不显着(P>0.05),1份+GSLS组鸭血清抗AIV特异性HI效价显着提高(P<0.05);饮水口服GSLS能显着增强鸭脾脏和法氏囊指数(P<0.05),显着提高受Con A刺激产生的脾淋巴细胞增殖转化指数,显着或不显着提高脾淋巴细胞上清中IFN-γ(Th1)和IL-4(Th2)水平,显着提高鸭肠黏膜SIg A含量;饮水口服中剂量GSLS组血清MDA和SOD含量分别显着低于和高于对照组(P<0.05)。因此,饮水口服GSLS具有增强鸭群对禽流感疫苗的免疫应答水平和机体抗氧化功能的作用。

郑梅, 王树平, 李善伟, 黄迪海, 张再辉[10]2016年在《商品鸭流感及其治疗新方法》文中进行了进一步梳理鸭流感是由高致病性禽流感H5亚型病毒感染引起的一种鸭的烈性病,在生物安全和免疫缺失的地区,其感染率和发病率均很高,尤其是2~6周龄的商品鸭极易感染,并可引起严重的呼吸道症状和神经症状,再加上后期的细菌继发感染,常常导致大量的死亡,死亡率往往在5%~40%,甚至全群覆没,经济损失十分严重。为有效预防和控制鸭流感的发生,项目组在进行流行病学调查

参考文献:

[1]. 鸭流感的免疫动态研究[D]. 黄得纯. 湖南农业大学. 2004

[2]. 四川省养鸭场鸭流感免疫程序调查及抗体水平监测[D]. 王梅. 四川农业大学. 2013

[3]. 旱养模式鸭流感灭活疫苗的免疫试验[D]. 陈炳中. 福建农林大学. 2013

[4]. 鸭免疫H5N1亚型禽流感油乳剂灭活苗的免疫动态研究[J]. 黄得纯, 陈建红, 薛立群, 杨承忠, 林丽超. 中国家禽. 2005

[5]. 番鸭呼肠孤病毒与H9AIV协同感染对番鸭体液免疫机能的影响[D]. 蔡羲. 福建农林大学. 2010

[6]. 鸭源H_5N_1亚型禽流感病毒与鸡源H_5N_1亚型禽流感病毒的生物学特性和分子生物学特性的比较[D]. 席瑞珍. 河南农业大学. 2004

[7]. 禽流感H9N2灭活抗原饮水免疫对鸭消化道局部和全身免疫水平的影响[D]. 王红丽. 南京农业大学. 2010

[8]. 商品鸭流感疫苗免疫抗体的监测[J]. 苏敬良, 张国中, 黄瑜, 赵继勋. 中国兽医杂志. 2004

[9]. 人参茎叶皂甙对鸭禽流感疫苗的免疫增强作用和抗氧化功能的影响[J]. 杨金保, 张琳, 李兆华, 李禹涛, 吴媛媛. 山东农业科学. 2017

[10]. 商品鸭流感及其治疗新方法[J]. 郑梅, 王树平, 李善伟, 黄迪海, 张再辉. 山东畜牧兽医. 2016

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鸭流感的免疫动态研究
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