核盘菌存活因子基因SsSvf1功能研究

核盘菌存活因子基因SsSvf1功能研究

论文摘要

核盘菌(Sclerotinia sclerotiorum(Lib.)de Bary)是一种世界性分布的重要死体营养型植物病原真菌,可侵染400多种植物,对农产品的品质和产量造成巨大损失。病原菌在侵染过程中需抵抗或耐受由于活性氧爆发而造成的寄主氧化压力,但到目前为止,对核盘菌抵抗氧化胁迫的机制知之甚少。本研究前期发现核盘菌基因SsSvf1(SS1G01919)在病原菌侵染寄主初期表达量显著升高,该基因编码一个酿酒酵母(Saccharomyes cerevisiae)存活因子1(Svf1,Survive factor 1)的同源蛋白,SVF1能帮助酿酒酵母应对氧化胁迫并维持细胞活性。为揭示核盘菌抵御氧化压力及致病机理,本研究对核盘菌SsSvf1基因的功能进行了深入研究。利用生物信息学技术对SsSvf1基因进行分析,结果表明SsSvf1基因编码区全长1146bp,编码381个氨基酸,保守结构域分析表明其C端为存活因子1结构域(Survival factor 1,Svf1),通过构建系统进化树发现SsSvf1和灰霉(Botrytis cinerea)XP001548941、白霉病菌(Sclerotinia borealis)ESZ99098聚为一个小的分支,说明三者的亲缘关系较近。利用实时荧光RT-PCR分析核盘菌SsSvf1基因表达模式,发现该基因在氧化应激和致病初期表达量显著升高,表明该基因的表达受氧化胁迫的诱导,并可能在致病过程发挥重要作用。本研究构建了SsSvf1基因的沉默载体,并通过PEG介导的原生质体转化技术获得了基因沉默转化子。对SsSvf1基因沉默转化子菌丝、菌落形态进行了观察,并对形成菌核的数量和干重进行统计,发现菌丝和菌落形态、菌核形成与野生型菌株无显著差异。相比于野生型,SsSvf1沉默转化子在添加了蔗糖、山梨醇和氯化钠的PDA培养基中生长受到显著抑制,表明SsSvf1参与核盘菌对高渗胁迫的抵御过程;在含有细胞壁抑制剂十二烷基硫酸钠和刚果红的培养基上,SsSvf1沉默转化子的生长也受到更显著的抑制,表明该基因与细胞壁完整性相关。在氧化胁迫下,SsSvf1沉默转化子生长更加敏感,表明SsSvf1与核盘菌应对氧化胁迫密切相关;通过氮蓝四唑(NBT)染色检测沉默转化子中的活性氧(ROS),结果发现该基因的沉默导致了ROS的过量积累。利用高效液相色谱对分泌的草酸进行定量分析,发现该基因的沉默并不会造成草酸积累量的变化;但沉默转化子在离体油菜叶片和拟南芥叶片上致病力显著降低,而人为造成伤口可以部分恢复沉默转化子的致病力;台盼蓝染色进一步表明沉默转化子的侵染垫形成异常,表明该基因与核盘菌侵染垫的形成密切相关。本研究表明该基因在核盘菌应对氧化等胁迫及致病过程中发挥重要作用。本研究构建了SsSvf1的FLAG融合表达载体,并通过PEG介导的原生质体转化获得SsSvf1融合FLAG标签转化子。通过RT-PCR和Western blot表明转化子表达了带有FLAG标签的SsSvf1蛋白。通过CO-IP和LC-MS/MS分析,鉴定了可能和核盘菌SsSvf1互作的蛋白,利用酵母双杂交对部分蛋白进行了互作验证,最终确定过氧化氢酶SsCat2(SS1G00547)与SsSvf1互作,推测核盘菌SsSvf1很可能通过与过氧化氢酶互作调控侵染过程中的活性氧产生,并在核盘菌的致病过程中起关键作用。本研究解析了核盘菌SsSvf1基因在氧化应激、致病等过程中的作用,为揭示核盘菌致病机理提供了理论依据,也为菌核病的防治提供了重要的线索,此外,本研究也为探索其他真菌中SsSvf1同源蛋白的功能提供了重要参考。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第1章 文献综述
  •   1 核盘菌的研究进展
  •     1.1 核盘菌及其危害
  •     1.2 菌核病的防治
  •     1.3 植物病原菌与寄主植物的互作
  •     1.4 核盘菌的致病机理
  •     1.5 SVF1 基因研究进展
  •   2 本研究的目的与意义
  • 第2章 核盘菌SsSvf1 基因基本特性研究
  •   1 试验材料
  •     1.1 供试菌株
  •     1.2 试验相关培养基
  •     1.3 试验试剂及仪器
  •   2 试验方法
  •     2.1 核盘菌SsSvf1 基因结构预测
  •     2.2 核盘菌SsSvf1 基因在生长发育时期的表达
  •     2.3 核盘菌SsSvf1 基因在氧化胁迫下的表达
  •     2.4 核盘菌SsSvf1 基因在致病过程中的表达
  •   3 结果与分析
  •     3.1 SsSvf1 蛋白结构分析
  •     3.2 核盘菌SsSvf1 基因在生长发育阶段的表达
  •     3.3 核盘菌SsSvf1 基因在氧化胁迫下的表达
  •     3.4 核盘菌SsSvf1 基因在致病过程中的表达
  •   4 讨论
  • 第3章 核盘菌Ss Svf1 基因功能研究
  •   1 材料
  •     1.1 材料
  •   2 方法
  •     2.1 SsSvf1 基因沉默载体的构建
  •     2.2 核盘菌原生质体的制备
  •     2.3 PEG介导核盘菌原生质体转化
  •     2.4 SsSvf1 沉默转化子的筛选
  •     2.5 SsSvf1 基因沉默转化子菌丝、菌落形态及菌核形成
  •     2.6 SsSvf1 基因沉默转化子抵抗高渗胁迫能力分析
  •     2.7 SsSvf1 基因沉默转化子在氧化胁迫下的敏感性测定
  •     2.8 SsSvf1 基因沉默转化子的致病力测定
  •     2.9 SsSvf1 基因沉默转化子侵染垫形成观察
  •     2.10 SsSvf1 基因沉默转化子分泌草酸定量分析
  •     2.11 SsSvf1 基因沉默转化子细胞壁完整性测定
  •     2.12 SsSvf1 基因沉默转化子ROS染色
  •     2.13 抑制植物ROS产生对SsSvf1 基因沉默转化子致病力的影响
  •   3 结果与分析
  •     3.1 SsSvf1 基因沉默转化子的获得
  •     3.2 SsSvf1 基因沉默转化子菌丝、菌落形态及菌核形成数量分析
  •     3.3 SsSvf1 基因沉默转化子在氧化胁迫下的敏感性测定
  •     3.4 SsSvf1 基因沉默转化子致病力测定
  •     3.5 SsSvf1 基因沉默转化子侵染垫形成
  •     3.6 SsSvf1 基因沉默转化子草酸形成测定
  •     3.7 SsSvf1 基因沉默转化子细胞壁完整性测定
  •     3.8 SsSvf1 基因沉默转化子抵抗高渗能力分析
  •     3.9 SsSvf1 基因沉默转化子产生ROS比较
  •     3.10 抑制植物ROS产生后SsSvf1 基因沉默转化子的致病力测定
  •   4 讨论
  • 第4章 SsSvf1 调控核盘菌致病性机理研究
  •   1 材料
  •     1.1 主要材料
  •     1.2 仪器
  •   2 方法
  •     2.1 SsSvf1 融合FLAG标签表达载体的构建
  •     2.2 SsSvf1 融合FLAG蛋白转化子的获取
  •     2.3 SsSvf1-FLAG融合蛋白转化子的RNA水平表达鉴定
  •     2.4 SsSvf1-FLAG融合蛋白转化子菌株的总蛋白的提取
  •     2.5 SDS-PAGE电泳
  •     2.6 SsSvf1-FLAG融合蛋白转化子的蛋白水平表达鉴定
  •     2.7 CO-IP获取互作蛋白
  •     2.8 酵母双杂交验证SsSvf1 互作蛋白
  •   3 结果与分析
  •     3.1 RT-PCR验证SsSvf1 融合FLAG标签蛋白的表达
  •     3.2 Western blot分析SsSvf1 融合FLAG标签蛋白在蛋白水平的表达
  •     3.3 CO-IP获取互作蛋白
  •     3.4 酵母双杂交验证SsSvf1 互作蛋白
  •   4 讨论
  • 第5章 结论与展望
  •   1 结论
  •   2 展望
  • 参考文献
  • 附录A 本论文中所用术语缩写与中英文对照
  • 致谢
  • 硕士期间发表论文情况
  • 文章来源

    类型: 硕士论文

    作者: 杜娇

    导师: 毕朝位,余洋

    关键词: 核盘菌,存活因子,氧化应激,致病力,过氧化氢酶

    来源: 西南大学

    年度: 2019

    分类: 基础科学,农业科技

    专业: 生物学,农业基础科学,植物保护

    单位: 西南大学

    分类号: S432.44

    总页数: 68

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