再水化冻干血小板论文-徐晶,张莹莹,杜忻,陈火玲,杨南

再水化冻干血小板论文-徐晶,张莹莹,杜忻,陈火玲,杨南

导读:本文包含了再水化冻干血小板论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献,主要关键词:血小板,冻干再水化,结构与功能

再水化冻干血小板论文文献综述

徐晶,张莹莹,杜忻,陈火玲,杨南[1](2014)在《冻干再水化血小板结构与功能研究》一文中研究指出目的探索血小板冻干保存及再水化后结构与功能的改变。方法选择过期的冻干再水化血小板为实验对象,以新鲜血小板作为对照,分别用血小板计数仪、扫描电镜、透射电镜、血小板聚集仪和叁色流式细胞仪检测血小板的回收率、稳定性、形态、超微结构、聚集反应和膜表面糖蛋白的表达。结果实验组血小板计数明显下降,血小板回收率为49.36%,且随着血小板放置时间的延长,血小板回收率逐渐下降,血小板透光性较差,分泌颗粒数目较少。实验组凝血酶、ADP、胶原及瑞斯托霉素的最大聚集率均与对照组有明显统计学差异(P<0.05)。凝血酶作用后CD62p再表达率为44.02%,显着低于对照组70.31%(P<0.05),PAC-1再表达率为38.90%,显着低于对照组65.28%(P<0.05)。结论过期血小板冻干再水化后的恢复率较低,稳定性较差,结构和功能均低于新鲜血小板,但冻干再水化血小板仍具有一定的活性,为新鲜血小板的冻干保存提供了基础。(本文来源于《实验与检验医学》期刊2014年05期)

刘瑛,许先国,洪小珍,马开荣,朱发明[2](2008)在《血小板冻干再水化的形态结构与凋亡》一文中研究指出目的探讨冷冻干燥法对血小板的细胞形态、超微结构和细胞凋亡的影响。方法以新鲜血小板为对照,以保存30d后再水化的冻干血小板为实验对象,分别在倒置相差显微镜和透射电镜下观察血小板的细胞形态和超微结构,用流式细胞仪(FCM)检测血小板凋亡率,并以1×103U/L凝血酶为诱导剂检测再水化血小板的聚集活性。结果与新鲜血小板相比,冻干再水化后的血小板在形态上为圆盘状,未见有明显的细胞聚集,仅细胞透光性相对较弱;超微结构上也无明显变化,其内部基本结构清晰可辨,细胞膜、细胞器及分泌颗粒的包膜保持完整。新鲜血小板的细胞早期凋亡率为(0.44±0.19)%,显着低于冻干血小板的细胞凋亡率(3.25±1.68)%(P<0.05)。冻干再水化血小板的最大聚集率为(93.28±2.3)%。结论冻干再水化的血小板形态结构完整,细胞内超微结构完好,为本实验室成功建立血小板冻干保存方法提供了依据。(本文来源于《基础医学与临床》期刊2008年11期)

刘景汉,卢发强,庄远,车辑,陈麟凤[3](2006)在《冻干血小板再水化后稳定性的实验研究》一文中研究指出目的探讨冻干血小板再水化后的稳定性变化。方法使用血细胞计数仪测定冻干血小板再水化后细胞计数回收率,以及在室温条件下随放置时间的不同,胞内外海藻糖浓度变化的趋势。结果冻干血小板再水化后,细胞计数回收率在8h内保持稳定。胞外海藻糖浓度为30mM和1%人血清白蛋白混合物,可使冻干血小板回收率显着提高(P<0.01)。结论负载海藻糖的冻干血小板再水化后8h内仍保持较好的稳定性,海藻糖可使冻干再水化血小板的稳定性显着提高。(本文来源于《临床输血与检验》期刊2006年04期)

周庆申[4](2006)在《冻干再水化人类血小板调节细胞内pH值》一文中研究指出背景血小板在干燥状态下长期储存可大大改善血小板的保存期。本研究目的在于评估海藻糖-冻干及再水化过程是否调节血小板内pH值(pHi)。研究设计与方法先前的研究表明,人类血小板可在海藻糖存在条件下成功保存,用pH染料BCECF-AM标记海藻糖-冻干再水化血小(本文来源于《国际输血及血液学杂志》期刊2006年05期)

刘景汉,卢发强,庄远,车辑,陈麟凤[5](2006)在《冻干血小板再水化后聚集》一文中研究指出本研究旨在观察冻干血小板再水化后聚集反应性变化。以4种不同浓度的凝血酶、瑞斯托霉素、ADP、胶原作诱导剂,使用APACT2型血小板聚集仪,检测冻干再水化和新鲜血小板的最大聚集率,以ADP为诱导剂,检测胞内外海藻糖对再水化冻干血小板最大聚集率的影响。结果表明当凝血酶、瑞斯托霉素、ADP、胶原浓度分别为1U/ml、1.6mg/ml、20μmol/L、2μg/ml时,新鲜血小板最大聚集率达100%左右,冻干再水化血小板最大聚集率分别达(70.17±7.36)%、(15.3±2.81)%、(68.67±6.86)%、(64.67±11.6)%。胞内外海藻糖组、胞外海藻糖组、空白对照组冻干再水化血小板最大聚集率分别达(66.0±4.69)%、(25.3±2.42)%、(11.5±1.87)%(P<0.01)。结论凝血酶、瑞斯托霉素、ADP、胶原浓度分别为1U/ml、1.6mg/ml、20μmol/L、2μg/ml可作为血小板聚集实验的合适浓度,胞内外海藻糖使冻干再水化血小板最大聚集率显着提高。(本文来源于《中国实验血液学杂志》期刊2006年04期)

卢发强[6](2006)在《人血小板冻干前负载海藻糖及冻干再水化后特性研究》一文中研究指出目的 研究人血小板冻干前负载海藻糖技术与方法,筛选合适负载条件,可逆性抑制血小板激活,保护血小板功能。并以此检测血小板冻干再水化后特性。 方法 应用硫酸-蒽酮反应,定量检测载入到血小板胞内的海藻糖,绘制血小板胞内海藻糖浓度及负载效率随温度、时间、胞外海藻糖浓度变化曲线,制定出合适负载海藻糖条件。使用APACT-2型血小板聚集仪,分别检测血小板负载海藻糖前后聚集反应性变化。使用流式细胞仪分别测定血小板在自身血浆和负载缓冲液中负载海藻糖前后、在含有和未含有DMSO(2%)溶液的缓冲液中负载海藻糖后,血小板膜表面糖蛋白CD_(62P)、PAC-1的表达。应用硫酸-蒽酮反应,测定血小板在含有和未含有DMSO(2%)缓冲液中,37℃条件下,负载海藻糖4h后的胞内海藻糖浓度。用激光共聚焦荧光显微镜观察分析荧光黄CH(LYCH)被负载入血小板内的量及分布随DMSO(2%)的添加、负载温度、及负载时间变化的趋势。分别使用流式细胞仪和硫酸-蒽酮反应,测定分析不同浓度可逆性激活抑制剂PGE_1和腺苷添加后,血小板膜表面CD_(62P)、PAC-1的表达和血小板负载海藻糖效率。用血细胞计数仪检测再水化冻干血小板计数回收率随冻干液中胞外海藻糖、人血清白蛋白浓度、及室温放置时间的变化趋势。使用APACT-2型血小板聚集仪分别检测新鲜和再水化冻干血小板对四种不同浓度诱导剂的聚集反应,检测冻干液中胞内外海藻糖浓度对冻干再水化血小板聚集反应的影响。使用流式细胞仪分别检测分析胞内、外海藻糖浓度及低浓度DMSO溶液的添加对再水化冻干血小板膜表面CD_(62P)、PAC-1表达的影响。用全自动血凝仪检测富含血小板血浆(PRP)冻干再水化后不稳定凝血因子Ⅷ和V活性变化。结果 (1)建立了血小板胞内海藻糖提取和定量测定方法。37℃时,4h,胞外海藻糖浓度<50mmol/L为冻干前血小板负载海藻糖合适条件。(2)血小板负载海藻糖前后聚集反应性无显着性差别(P>0.05)。在含有可逆性激活抑制剂腺苷(5mmol/L)和PGE_1(10μg/ml)的缓冲液中负载海藻糖(本文来源于《中国人民解放军军医进修学院》期刊2006-05-01)

再水化冻干血小板论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

目的探讨冷冻干燥法对血小板的细胞形态、超微结构和细胞凋亡的影响。方法以新鲜血小板为对照,以保存30d后再水化的冻干血小板为实验对象,分别在倒置相差显微镜和透射电镜下观察血小板的细胞形态和超微结构,用流式细胞仪(FCM)检测血小板凋亡率,并以1×103U/L凝血酶为诱导剂检测再水化血小板的聚集活性。结果与新鲜血小板相比,冻干再水化后的血小板在形态上为圆盘状,未见有明显的细胞聚集,仅细胞透光性相对较弱;超微结构上也无明显变化,其内部基本结构清晰可辨,细胞膜、细胞器及分泌颗粒的包膜保持完整。新鲜血小板的细胞早期凋亡率为(0.44±0.19)%,显着低于冻干血小板的细胞凋亡率(3.25±1.68)%(P<0.05)。冻干再水化血小板的最大聚集率为(93.28±2.3)%。结论冻干再水化的血小板形态结构完整,细胞内超微结构完好,为本实验室成功建立血小板冻干保存方法提供了依据。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

再水化冻干血小板论文参考文献

[1].徐晶,张莹莹,杜忻,陈火玲,杨南.冻干再水化血小板结构与功能研究[J].实验与检验医学.2014

[2].刘瑛,许先国,洪小珍,马开荣,朱发明.血小板冻干再水化的形态结构与凋亡[J].基础医学与临床.2008

[3].刘景汉,卢发强,庄远,车辑,陈麟凤.冻干血小板再水化后稳定性的实验研究[J].临床输血与检验.2006

[4].周庆申.冻干再水化人类血小板调节细胞内pH值[J].国际输血及血液学杂志.2006

[5].刘景汉,卢发强,庄远,车辑,陈麟凤.冻干血小板再水化后聚集[J].中国实验血液学杂志.2006

[6].卢发强.人血小板冻干前负载海藻糖及冻干再水化后特性研究[D].中国人民解放军军医进修学院.2006

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