导读:本文包含了体外转录论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:转录,体外,蛋白,核糖,氯霉素,化学合成,赖氨酸。
体外转录论文文献综述
李玥,孟庆峰,高明,姚贵哲,丛彦龙[1]（2019）在《H9N2亚型禽流感病毒HA基因体外转录及RNA标准品的初步构建》一文中研究指出为了提高H9N2亚型禽流感病毒核酸检测结果的准确性,同时减少试验操作中的污染,对H9N2亚型禽流感病毒HA全长基因序列进行克隆及体外转录,构建用于检测H9N2亚型禽流感HA基因阳性核酸标准品。采用实时荧光定量RT-PCR方法对转录的RNA片段进行验证。结果表明:HA体外转录产物可以准确提供RNA片段的拷贝数并进行定性和定量分析。H9N2亚型禽流感病毒HA基因体外转录RNA可作为H9N2禽流感病毒核酸检测标准品的候选产物。(本文来源于《吉林农业大学学报》期刊2019年02期）
林煊,陈鹤丹,谢颖,曾柱,胡祖权[2]（2018）在《小鼠黏蛋白1(MUC1)基因的体外转录及其在NIH/3T3细胞中的表达》一文中研究指出目的体外转录获得小鼠黏蛋白1(MUC1) mRNA并在NIH/3T3细胞中表达。方法通过反转录PCR从小鼠4T1细胞中扩增MUC1基因,然后插入真核表达载体pc DNA3. 1(+)中构建重组表达载体pc DNA3. 1(+)-MUC1。双酶切鉴定正确后,以该质粒为模板,下游引物中引入血凝素标签(HA TAG)序列,PCR扩增MUC1-HA TAG融合基因片段,然后克隆至表达载体pc DNA3. 1(+),重组载体经双酶切鉴定和DNA序列测定后作为模板,PCR扩增获得含T7启动子和MUC1-HA TAG融合基因片段的PCR产物作为体外转录模板,通过体外转录、加尾、纯化最终获得修饰的MUC1 mRNA。通过多种转染试剂将体外转录MUC1-HA TAG mRNA转入NIH/3T3细胞,Western blot法检测融合蛋白MUC1-HA TAG的表达。结果反转录PCR扩增的MUC1基因长度约为1900 bp,酶切鉴定和序列分析证实MUC1-HA TAG融合基因已成功插入pc DNA3. 1(+)质粒。插入序列与Gen Bank中小鼠的MUC1基因序列完全一致,HA TAG正确插入MUC1下游,读框正确。Western blot法分析证实体外转录修饰的MUC1-HA TAG mRNA能在NIH/3T3细胞中表达。结论体外转录修饰的小鼠MUC1-HA TAG mRNA能在哺乳动物NIH/3T3细胞中翻译表达。(本文来源于《细胞与分子免疫学杂志》期刊2018年10期）
耿国伟,于成明,李向东,原雪峰[3]（2019）在《小麦黄花叶病毒Nib蛋白介导的体外转录体系的创建》一文中研究指出本研究是利用异源表达的小麦黄花叶病毒(Wheat yellow mosaic virus,WYMV)复制酶Nib蛋白创建了病毒核酸的体外复制系统。将WYMV的Nib编码序列扩增并插入到大肠杆菌表达载体p MAL-C2X中以构建原核表达质粒p MAL-WYNib。0.4 mmol·L~(-1)IPTG诱导可特异性表达分子量约为100 k Da的M BP-Nib融合蛋白。根据温度梯度测定,20℃下诱导M BP-Nib的可溶性比例较高,约为30%,可满足M BP标签的亲和层析。通过与WYM V的其他蛋白和烟草丛顶病毒的RdRp进行比较,纯化的M BP-Nib融合蛋白可以特异性识别WYM V RNA1和RNA2的3'末端区域并体外合成其互补链,此体外转录体系可用于WYMV复制调控的研究。(本文来源于《植物病理学报》期刊2019年02期）
刘海涛,舒端阳[4]（2018）在《一种利用体外转录制备dsRNA的方法介绍》一文中研究指出通过实验采用2种不同的限制酶将靶基因插入一个双启动子的载体,利用体外转录的方法得到相应的dsRNA,可用于相应的RNA干扰试验,这种制备ds RNA的方式相比于其他方法更简单、高效。(本文来源于《生物学通报》期刊2018年06期）
高华峰,赵文华,高林,杨仕标[5]（2016）在《小反刍兽疫病毒原核表达体外转录系统的建立》一文中研究指出构建了小反刍兽疫病毒(PPRV)辅助质粒和微型复制子(minireplicon)并进行功能学研究。RT-PCR克隆PPRV疫苗株N75/1N、P和L基因,亚克隆至有T7启动子的原核表达载体pGEM3Z构建完成3个辅助质粒,分别命名为pGEM3Z-N、pGEM3Z-P和pGEM3Z-L,并通过全基因合成构建含PPRV病毒5′端启动子序列(AGP)、3′端启动子序列(GP)、T7转录终止信号、丁型肝炎病毒核酶序列HamRZ及氯霉素乙酰转移酶(CAT),获得PPRV微型复制子重组质粒pGEM3Z-CAT。构建完成的微型复制子及辅助质粒在表达T7RNA多聚酶(T7RNP)感染痘病毒VTF7-3后,通过脂质体法优化4种质粒配比,并将其转染至Vero细胞,通过间接免疫荧光分析CAT的表达情况,荧光显微镜观察到荧光的表达,并通过免疫印迹分析CAT蛋白的表达,表明构建的PPRV微型复制子具有转录和复制功能,这将有助于进一步开展以PPRV反向遗传操作为基础的免疫学及蛋白功能研究。(本文来源于《动物医学进展》期刊2016年10期）
杨磊,宋丽爽,刘雪霏,白力格,李光鹏[6]（2016）在《UTX与JMJD3体外转录载体构建及其在小鼠卵母细胞上的验证》一文中研究指出UTX(ubiquitously transcribed tetratricopeptide repeat X chromosome)和JMJD3(jumonji domain containing 3)是组蛋白H3赖氨酸27位叁甲基化(histone H3 lysine 27 trimethylation,H3K27me3)去甲基化酶,可以调控动物机体生长、肌肉发育、调节代谢等重要生理功能。本研究根据小鼠(Mus musculus)UTX和JMJD3 m RNA序列设计3对引物,分别构建了体外转录载体p MD19T-T7UTX和p MD19T-T7JMJD3。分别将体外转录m RNA注射进小鼠卵母细胞,并利用免疫荧光方法对H3K27me3进行检测。转录产物经电泳检测,结果显示,UTX与JMJD3条带清晰与预期大小相符;通过显微注射m RNA的卵母细胞,其H3K27叁甲基化修饰明显减少。本研究成功构建了UTX与JMJD3体外转录载体,并在细胞水平证明转录产物能够翻译出具有活性的酶,为利用此载体研究UTX与JMJD3在生长发育及相关疾病发生中的机制提供基础资料。(本文来源于《农业生物技术学报》期刊2016年08期）
肖丹[7]（2016）在《基于TALEN靶向基因组修饰技术的SOX2-Luciferase细胞系的建立及其体外转录激活实验研究》一文中研究指出SOX2作为一种重要的转录因子,在胚胎干细胞的干性维持和早期分化、IPS细胞的诱导以及很多基因的激活或抑制中均起着至关重要的调控作用。同时SOX2的表达异常与许多疾病的发生有关,并参与多种肿瘤的发生与发展。通过对SOX2基因表达调控的研究可以发现一些能够影响SOX2基因表达的相关基因及小分子药物,这些基因及小分子药物的发现将对SOX2基因功能的进一步阐明及SOX2基因的应用研究起到极大的推动作用。目前检测基因的调控表达主要是通过RT-PCR或者将目标基因启动子克隆到携带报告基因的检测表达载体中等手段来实现。RT-PCR过程繁琐且不稳定,不利于高通量筛选；由于基因组本身存在表观遗传学修饰,将启动子克隆到携带报告基因的表达检测载体中的方法无法模拟基因组的真实状态,因此难以准确反映基因组上启动子活性的变化。基因组靶向编辑技术的出现,使基因组的精确修饰成为可能。目前最为常用的叁种基因组靶向编辑技术为锌指核酸酶(zinc finger nuclease, ZFN)、转录激活因子样效应物核酸酶(transcription activator-like effector nuclease, TALEN)以及CRISPR/Cas (cluster regulatory interspaced short palindromic repeat/CRISPR associated proteins)等。它们的识别机制,组装方法,特异性等方面互不相同。其中,锌指核酸酶是最早出现的一种基因组编辑核酸酶,但由于其组装复杂,筛选成功率低,有脱靶效应,现在已经较少应用。与ZFN相比,TALEN具有组装相对容易、筛选成功率高、特异性强及切割活性高等特点。此外,CRISPR/Cas系统构建极其方便,实验周期短,但由于该系统对靶基因的识别是基于一小段sgRNA与靶基因之间的碱基配对来实现的,因此可能存在一定的脱靶风险。本课题将分别采用TALEN介导的靶向基因插入技术和CRISPR/Cas介导的转录激活技术建立并测试SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系。研究内容整体上可分为两大部分：一方面采用TALEN介导的靶向基因组修饰技术,分别在基因组上SOX2基因启动子下游及SOX2基因3'端整合入一个敏感的荧光素酶报告基因,建立两种可用于研究SOX2基因表达调控的SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系；另一方面为了验证所建立的细胞系的敏感性和准确性,我们建立了基于CRISPR/Cas技术的高效的转录激活系统,并使用该系统对所建立的SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系内的SOX2启动子进行转录激活及检测,并验证所建立的两种细胞系中的Luciferase的激活水平与内源性SOX2基因激活水平一致。两种细胞系的建立将为SOX2基因的表达调控、SOX2基因相关的信号通路、肿瘤治疗以及IPS细胞的诱导等研究提供一种新的工具,在医学及产业应用方面具有巨大潜力。本课题的具体研究内容如下：(1)靶向SOX2基因的’TALENs核酸酶的设计、组装及活性检测。根据对SOX2基因内源性启动子进行表达调控研究的需要,分别设计两种不同的基因打靶策略。一种是将Luciferase报告基因直接整合于SOX2基因内源性启动子之后,当报告基因插入相应位点后,替换了SOX2基因,破坏了该条染色体上SOX2分子的表达；另一种是将Luciferase报告基因插入到SOX2基因C端,使用SOX2基因启动子表达SOX2-T2A-Luciferase融合蛋白后通过自剪切小肽T2A剪切为两个独立的蛋白SOX2和Luciferase,该策略在不破坏SOX2分子本身表达的同时还可以表达报告基因。为了达到以上目的,通过查询SOX2基因结构及其启动子序列,我们利用ZiFiT软件在SOX2基因上选择了四个位于不同位置的TALENs靶位点,并依据靶位点处的基因组序列将TALE重复单元依次串联组装获得完整TALEs。经测序正确之后,将TALE分别连接到FokI核酸酶的N端,形成TALE-FokI融合基因,即TALEN。再将构建好的TALENs核酸酶表达载体分别转染HEK 293细胞系,使用T7 El assay方法检测TALEN核酸酶的切割活性。由此所获得的具有良好生物学切割活性的TALENs将用于上述两种打靶策略的实施。(2)靶向SOX2基因的两种打靶载体的构建。依据Luciferase报告基因的插入位置及成功筛选出的TALEN核酸酶的作用位点,分别设计可在SOX2基因启动子下游及SOX2基因C端插入荧光素酶报告基因的两种不同打靶载体。用于在SOX2基因启动子下游插入报告基因的打靶载体,其上游同源臂终止于SOX2基因起始密码子ATG之前,在上游同源臂之后直接插入Luciferase报告基因,在此之后插入正筛选元件CMV-eGFP-T2A-Neomycin-SV40pA。同时,为了方便建系后期对非特异性随机整合的细胞进行剔除,在打靶载体下游同源臂以外连接负筛选元件PGK-TK-T2A-mCherry-SV40pA,最终获得第一种打靶载体。而用于在SOX2基因C端插入报告基因的打靶载体,其上游同源臂终止于SOX2基因终止密码子TGA之前,在上游同源臂之后直接连接T2A自剪切小肽,隔开SOX2基因与Luciferase基因,使用SOX2基因启动子同时调控表达SOX2与Luciferase,载体其余部分同第一种打靶载体,最终获得第二种打靶载体。使用该两种打靶载体用于后续相应细胞系的建立。(3) SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系的建立。分别使用成功筛选的靶向不同位点的TALENs表达载体及各自对应的打靶载体共转HEK293细胞,再分别使用G418及GCV两种药物进行筛选,并对筛选后细胞经有限稀释法进行克隆化,再对克隆化后细胞通过PCR的方法进行初步鉴定,并对其中阳性克隆进行进一步测序及Southern Blot检测,证实携带荧光素酶报告基因的打靶载体在两个靶位点处的正确重组,最终获得单一稳定的SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系。(4)设计并构建靶向SOX2基因启动子区域用于转录激活的sgRNA的表达载体。根据NCBI查得SOX2基因的启动子序列,依据sgRNA设计原理选择7个sgRNA识别靶位点,合成对应引物,分别退火形成sgRNA1-7,并与sgRNA表达载体连接,测序正确最终获得SOX2 sgRNA1-7表达载体。该系列sgRNA表达载体将被应用于SOX2基因的转录激活实验研究。(5)建立CRISPR/dCas介导的高效的转录激活系统。通过PCR克隆VP64,P65及HSF1叁个转录激活相关基因,然后分别构建dCas9-VP64融合基因表达载体及MS2-P65-HSF1融合基因表达载体；最后构建sgRNA2.0表达载体,其骨架的突出环状部分插入了一段RNA适配体序列,该序列可与MS2蛋白特异性结合。将上述构建的包含转录激活相关基因的表达载体与sgRNA表达载体共同使用即可组成转录激活系统,使用该转录激活系统在载体水平对靶基因进行转录激活测试,并探讨靶向多个不同位点的sgRNA的串联使用对靶基因的转录激活效果。(6)验证SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系中Luciferase表达变化是否可以真实反映SOX2基因的相对表达量及表达变化。使用所建立的转录激活系统分别转染SOX2P-Luciferase、SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase及HEK293细胞系,并对SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系中的Luciferase活性及HEK293细胞系中SOX2分子的mRNA表达水平分别进行检测。通过对两种knock-in细胞系中的Luciferase表达活性与HEK293细胞中的SOX2 mRNA表达水平及表达变化的比较,进一步验证SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系中Luciferase活性是否可以准确反映SOX2分子的相对表达变化。综上所述,本课题首次采用TALEN核酸酶技术分别在基因组上SOX2基因启动子下游及SOX2基因的3’端原位整合入Luciferase报告基因,建立了SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase两种knock-in细胞系,并多方面验证了两种细胞系中外源基因在基因组上的定点整合。同时利用CRISPR/dCas技术构建了高效的转录激活系统,使用该系统分别对SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系进行转录激活,结果表明SOX2P-Luciferase及SOX2P-SOX2-T2A-Luciferase细胞系内的Luciferase表达水平可以准确灵敏地反映细胞系内SOX2分子表达水平。两种细胞系的建立将有助于SOX2基因功能研究及筛选影响SOX2表达的小分子化学药物,为肿瘤治疗和IPS.相关研究提供一种新的实验思路及解决方案。同时,本课题中所建立的通过在靶基因下游整合入报告基因来监测靶基因表达的方法也可广泛应用于其它各种基因的相关研究。(本文来源于《陕西师范大学》期刊2016-05-01）
郭鑫行,蔡汝洁,陈婷,张云龙,陆昌瑞[8]（2016）在《SAM-V核糖开关RNA体外转录体系优化》一文中研究指出为了提高RNA体外转录效率,选取SAM-V核糖开关晶体结构模板对RNA体外转录体系进行优化。结果表明:目的RNA相对百分含量在反应时间和Mg2+添加浓度分别为8h和85m M/L时达到最高值,优化体系较标准体系目的RNA相对百分含量提高了一倍。我们的工作为下一步准备SAMV核糖开关晶体打下了基础。(本文来源于《生物技术世界》期刊2016年04期）
吕建军,段大鑫,蒋帅,杨阳[9]（2016）在《体外转录信使RNA免疫疗法的研究进展》一文中研究指出体外转录信使RNA(IVT mRNA)是在体外条件下以DNA为模板转录得到的一种mRNA,这种mRNA可以指导特定蛋白质的合成,阻止或改变某种特定的疾病。因此,IVT mRNA可以作为一种传递遗传信息的潜在新药。与其他核酸药物相比,基于IVT mRNA的药物具有很多优势。随着mRNA技术发展,基于IVT mRNA的恶性肿瘤免疫疗法和治疗传染性疾病疫苗的研制等已步入临床应用阶段。本文系统地介绍了IVT mRNA的结构、合成方式、投递途径和免疫机制,着重分析了IVT mRNA免疫疗法在不同疾病临床治疗中的应用现状,如恶性肿瘤、传染性疾病和过敏反应等,并探讨了将其开发为新药所遇到的关键性机遇与挑战。(本文来源于《细胞与分子免疫学杂志》期刊2016年01期）
郭鑫行[10]（2016）在《RNA体外转录体系优化》一文中研究指出近几十年来,越来越多的研究发现RNA非编码基因片段具有应用在诊断和治疗重大疾病方面潜在的商业价值。非编码基因片段包括非编码RNA(non-coding RNA,ncRNA)和编码蛋白mRNA的非编码区段(untranslated region,UTR)。非编码RNA是所有不编码蛋白质的RNA转录本的统称,其代表是微小RNA(microRNA,miRNA)和长非编码RNA(long non-coding RNA,lncRNA)。在可编码蛋白mRNA上存在的非编码区段代表是核糖开关(riboswitch)。微小RNA是一类长度介于18~25个核苷酸的非编码RNA,研究表明人类编码蛋白的基因中约30%受到miRNAs调控。它们参与基因的表达及调控、RNA加工及剪切和蛋白质翻译等生物学过程,强烈调控着生物的生长和发育。长非编码RNA是一类长度大于二百个核苷酸的非编码RNA,它们参与基因的表达及调控、RNA加工及编辑、蛋白质翻译、印迹调控和端粒系统的调控等,同时其自身还可形成核酶或核糖开关。核糖开关是一类能够通过与代谢物小分子结合引起构象变化而调控下游基因表达的mRNA分子。核糖开关在细菌中有着广泛的分布,同时调控细菌体内很多重要基因的表达过程,调控细菌的基本生命代谢和信号传导。通常对于生物大分子结构和功能的研究都是运用结构生物学的方法达成。以rna为例,其主要研究步骤包括:目的rna获得与纯化、rna结晶、衍射和相角数据的收集及处理修正,最后是结构的描述和功能关系的研究。从上述步骤可以看出,如何获得转录量大、纯度高的目的rna是所有结构与功能研究的基础。目前,有关运用rna聚合酶体外转录生成rna时有报道。但是,有关用于非编码类rna结晶的体外转录却鲜有报道,特别是对晶体结构模板体外转录的优化实验更是未见报道。本文的立意点和创新点即在于选择sam-v核糖开关晶体结构模板作为代表物,参考doudna等报道的体外转录体系,对相关的反应条件进行优化,得到一个较优的用于非编码类rna结晶的体外转录体系,从而提高目的rna体外转录的效率。选择的优化条件包括反应时间、ntps添加浓度和镁离子添加浓度等几个方面。每次只改变一个因素,初步设计实验条件,对所得实验结果用聚丙烯酰胺凝胶检测,并使用bio-rad仪器对凝胶进行拍照和分析,在相同背景下对所得条带的rna浓度进行估算,得到目的rna相对百分含量,绘得其变化趋势图。其中有关反应时间的结果表明,目的rna相对百分含量随着反应时间的延长不断提高,在8h时达到最高值,对比标准对照体系目的rna产率提高了50%;ntps添加浓度的结果表明,目的rna相对百分含量随着ntps添加浓度的提高而不断提高,在添加浓度为4mm/l时达到最高值,对比标准对照体系目的rna产率提高了50%;镁离子浓度的结果表明,目的RNA相对百分含量随着Mg2+添加浓度的提高而不断提高,在Mg2+添加浓度为85mM/L时达到最高值,对比标准对照体系目的RNA产率提高了将近80%。最后,将上述单项最优条件组合成为RNA体外转录优化体系,与标准体系一起进行体外转录实验,比较两种体系生成目的RNA百分含量。结果显示,优化体系转录生成的目的RNA百分含量较标准对照体系提高了将近100%。(本文来源于《东华大学》期刊2016-01-12）
体外转录论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的体外转录获得小鼠黏蛋白1(MUC1) mRNA并在NIH/3T3细胞中表达。方法通过反转录PCR从小鼠4T1细胞中扩增MUC1基因,然后插入真核表达载体pc DNA3. 1(+)中构建重组表达载体pc DNA3. 1(+)-MUC1。双酶切鉴定正确后,以该质粒为模板,下游引物中引入血凝素标签(HA TAG)序列,PCR扩增MUC1-HA TAG融合基因片段,然后克隆至表达载体pc DNA3. 1(+),重组载体经双酶切鉴定和DNA序列测定后作为模板,PCR扩增获得含T7启动子和MUC1-HA TAG融合基因片段的PCR产物作为体外转录模板,通过体外转录、加尾、纯化最终获得修饰的MUC1 mRNA。通过多种转染试剂将体外转录MUC1-HA TAG mRNA转入NIH/3T3细胞,Western blot法检测融合蛋白MUC1-HA TAG的表达。结果反转录PCR扩增的MUC1基因长度约为1900 bp,酶切鉴定和序列分析证实MUC1-HA TAG融合基因已成功插入pc DNA3. 1(+)质粒。插入序列与Gen Bank中小鼠的MUC1基因序列完全一致,HA TAG正确插入MUC1下游,读框正确。Western blot法分析证实体外转录修饰的MUC1-HA TAG mRNA能在NIH/3T3细胞中表达。结论体外转录修饰的小鼠MUC1-HA TAG mRNA能在哺乳动物NIH/3T3细胞中翻译表达。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
体外转录论文参考文献
[1].李玥,孟庆峰,高明,姚贵哲,丛彦龙.H9N2亚型禽流感病毒HA基因体外转录及RNA标准品的初步构建[J].吉林农业大学学报.2019
[2].林煊,陈鹤丹,谢颖,曾柱,胡祖权.小鼠黏蛋白1(MUC1)基因的体外转录及其在NIH/3T3细胞中的表达[J].细胞与分子免疫学杂志.2018
[3].耿国伟,于成明,李向东,原雪峰.小麦黄花叶病毒Nib蛋白介导的体外转录体系的创建[J].植物病理学报.2019
[4].刘海涛,舒端阳.一种利用体外转录制备dsRNA的方法介绍[J].生物学通报.2018
[5].高华峰,赵文华,高林,杨仕标.小反刍兽疫病毒原核表达体外转录系统的建立[J].动物医学进展.2016
[6].杨磊,宋丽爽,刘雪霏,白力格,李光鹏.UTX与JMJD3体外转录载体构建及其在小鼠卵母细胞上的验证[J].农业生物技术学报.2016
[7].肖丹.基于TALEN靶向基因组修饰技术的SOX2-Luciferase细胞系的建立及其体外转录激活实验研究[D].陕西师范大学.2016
[8].郭鑫行,蔡汝洁,陈婷,张云龙,陆昌瑞.SAM-V核糖开关RNA体外转录体系优化[J].生物技术世界.2016
[9].吕建军,段大鑫,蒋帅,杨阳.体外转录信使RNA免疫疗法的研究进展[J].细胞与分子免疫学杂志.2016
[10].郭鑫行.RNA体外转录体系优化[D].东华大学.2016
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