导读:本文包含了钙离子成像论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:钙成像,腺相关病毒,伏隔核,GCaMP6f
钙离子成像论文文献综述
刘泽玥,许琪[1]（2016）在《利用GCaMP6f蛋白对小鼠伏隔核神经元活动的钙离子成像》一文中研究指出目的在小鼠伏隔核表达GCa MP6f蛋白,并在束缚状态下,应用钙成像技术实时监测小鼠伏隔核内活化的神经元。方法首先,包装并纯化aav-Syn1-GCa MP6f-P2A-Tomato病毒,并通过感染原代神经元验证目的蛋白的表达和功能。然后,通过脑立体定位技术注射aav-Syn1-GCa MP6f-P2A-Tomato病毒于小鼠伏隔核脑区,动物恢复21 d后,插入光纤,在其清醒状态下,给予束缚刺激,用钙成像技术实时记录伏隔核神经元的活化。结果表达GCa MP6f的原代神经元在给予谷氨酸刺激后,神经元被活化,Ca2+内流而产生绿色荧光;通过在体实验,给予小鼠束缚刺激,可在视野内检测到因伏隔核神经元活化而发出的绿色荧光信号;鼠脑切片同样可检测到位于胞质的绿色荧光信号与位于细胞核的病毒红色荧光标记共定位于相同细胞。结论 aav-Syn1-GCa MP6f-P2A-Tomato腺相关病毒可成功用于在体活化神经元的实时监测。通过在小鼠伏隔核定点注射该病毒,给予束缚刺激,应用钙成像技术可实时记录到小鼠伏隔核的活化神经元。(本文来源于《基础医学与临床》期刊2016年06期）
胡振妍,赵晓玉,王浩然,林金星,荆艳萍[2]（2016）在《植物细胞钙离子检测与成像技术研究进展》一文中研究指出钙离子是一种重要的第二信使,参与调节植物多种生理和发育过程。胞内钙离子呈现复杂的时空动态变化,只有实时捕获钙离子在植株整体水平以及亚细胞水平的变化,才能深入理解钙信号的重要功能。过去几十年中,人们在钙离子检测与成像技术方面进行了大量探索,本文总结了近年来植物科学研究中常用的钙离子检测与成像技术,着重介绍了化学荧光探针和基于荧光蛋白钙离子探针的原理、特点、浓度计算方法、在细胞质以及细胞器钙离子检测与成像中的应用等,并总结了化学荧光探针的装载方法。(本文来源于《电子显微学报》期刊2016年02期）
宋蔚林,赵从健,阴正勤,王一[3]（2015）在《GCaMP基因工程化的C17.2神经干细胞的钙离子成像研究》一文中研究指出目的研究GCa MP(属于基因编码钙指示剂/蛋白钙指示剂)基因工程化的C17.2神经干细胞的钙离子成像。方法用慢病毒转染C17.2细胞,获得稳定表达GCa MP基因的C17.2-GCa MP细胞。Real-time PCR定量检测C17.2细胞及C17.2-GCa MP细胞中神经干细胞标志物巢蛋白(nestin)的表达情况。将C17.2细胞(Fluo-4 AM染色后)和C17.2-GCa MP细胞置于定制数字荧光显微镜下进行钙离子荧光检测。结果 Real-time PCR检测结果提示C17.2细胞及C17.2-GCa MP细胞中nestin表达差异无统计学意义(P>0.05)。C17.2-GCa MP细胞较Fluo-4 AM染色C17.2细胞钙离子荧光锐波(spike)波形持续时间长且相对荧光强度强(P<0.05),在Fluo-4 AM染色C17.2细胞中能观察到钙离子荧光慢波(wave)波形,而C17.2-GCa MP wave波形不典型。结论 C17.2-GCa MP细胞在保持神经干细胞干性的同时能够监测细胞内钙离子变化,能够运用于神经干细胞移植治疗视网膜色素变性功能整合的研究。(本文来源于《第叁军医大学学报》期刊2015年11期）
陈江旭[4]（2014）在《腺苷诱导DRG神经元钙离子动态响应的光学检测与显微成像》一文中研究指出疼痛影响着人类生活的方方面面。针灸在治疗疼痛方面有显着疗效,但其中机理还尚未明确。腺苷是一种参与针灸镇痛过程的重要信号分子,而细胞第二信使钙离子水平的变化与多种神经生理过程息息相关。因此,研究腺苷对神经细胞中钙离子水平动态变化的影响有助于进一步从细胞分子层面揭示针灸镇痛过程中的作用机理。本文基于光学检测与显微成像技术,以揭示针灸镇痛过程中的分子机理为目的,初步研究腺苷刺激所引起的神经元中钙离子动态响应及其中可能的作用机理。本文首先利用单光子成像技术结合免疫荧光技术对大鼠背根神经节(DRG)神经元中腺苷受体亚型的表达进行鉴定,鉴定结果发现四种腺苷受体亚型在DRG神经元中都有表达。其次,利用光学检测与成像技术结合Ca2+特异性荧光探针Fluo4/AM,研究不同浓度腺苷刺激对DRG神经元中钙离子浓度变化的影响及引起该变化的可能途径,结果发现腺苷能引起胞内钙离子水平上升,且与腺苷浓度呈现剂量相关。此外还发现胞内钙库钙释放是引起其浓度上升的主要原因。最后利用腺苷受体的特异性阻断剂与激动剂,初步探索腺苷诱导胞内钙释放的可能机制,研究结果表明腺苷A1与A3受体可能参与腺苷刺激所引起的DRG神经元中的钙释放。(本文来源于《福建师范大学》期刊2014-06-30）
谷峰,付丽,马勇杰[5]（2009）在《利用FM成像方法检测突触前膜钙离子通道介导的神经递质释放(英文)》一文中研究指出目的突触前膜上的钙离子通道介导钙离子内流,从而实现突触小泡的胞吐以及神经递质释放。1992年Betz等首次发现FM1-43染料可以作为一种标记荧光用于科学研究。目前,FM1-43染料已被广泛用于检测各种细胞类型的胞吞和胞吐过程。本研究旨在探讨将FM1-43染料用于检测突触前膜钙离子通道介导的神经递质释放的可行性。方法取孕鼠进行原代大鼠神经元的培养,利用带有Ds-Red标记的质粒进行转染,48小时后经8μmol/L的FM1-43染料和47mmol/L的KCl孵育90秒,然后用90mmol/L的KCl再次孵育,其间用FM1-43成像技术记录代表突触的亮点荧光衰减的过程。结果FM1-43染料能有效标记大鼠海马神经元突触末端,刺激后被标记部位的荧光强度衰减的过程与神经递质的释放过程相一致,并且这个过程可以被L型钙离子通道抑制剂硝苯地平抑制。结论FM1-43成像技术能够检测钙离子介导的神经递质的释放过程,是一种非常先进并切实有效的检测神经元突触末端神经递质释放过程的手段和方法。(本文来源于《Neuroscience Bulletin》期刊2009年04期）
方晓峰,赵晓婷,周维,李佳,刘琴[6]（2008）在《4种钙离子检测/成像系统检测细胞胞浆钙振荡的比较》一文中研究指出胞浆钙离子浓度的规律性增加,已经在动物、植物、微生物等许多重要生命活动中得以证明,如肌肉收缩、细胞分泌、卵子授精、神经传导、个体发育、细胞凋亡以及病原生物(寄生虫、细菌、病毒)对哺乳动物细胞的侵袭过程中的重要性,已经得到广泛认可.因此,活细胞不同微区中钙离子浓度规律性变化的成像研究已受到越来越多的关注.虽然目前多个厂家可以提供钙离子成像系统,但用户在根据需要进行选择时,往往得不到有关设备的足够信息,因此很难做出正确的选择.文中详细比较了4种不同配置的钙离子浓度测量系统在检测胰腺腺泡细胞和肝脏实质细胞胞浆钙离子浓度的振荡样增加时的性能差异,分析了这些差异的原因及解决方法,为钙离子成像系统的使用者和制造商提供参考信息.(本文来源于《自然科学进展》期刊2008年11期）
姚军,棚赖精叁,田村康夫,吉田定宏[7]（2008）在《大鼠牙釉质形成中钙离子的成像及其信息传递的分析》一文中研究指出目的探讨钙离子在不同发育期的大鼠造釉细胞中的变化和与信息传递有关的因子的分布。方法使用共焦点激光显微镜和免疫荧光法来分析出生后5、7、10天的大鼠上颌第一磨牙牙胚中钙离子的分布。结果共焦点激光显微镜成像表明出生后5、7、10天的大鼠上颌第一磨牙牙胚中钙离子的荧光强度明显增强,而且强弱部分相互交叉的频率也明显增加。钙结合蛋白的免疫荧光显像从分化期,分泌期,移行期到成熟期依次增加,而且在成釉细胞内部两端的显像强度高于细胞中央。结论钙离子在釉质形成和进行同结构形成有关的信息传递中起着重要的作用。(本文来源于《现代口腔医学杂志》期刊2008年03期）
钙离子成像论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
钙离子是一种重要的第二信使,参与调节植物多种生理和发育过程。胞内钙离子呈现复杂的时空动态变化,只有实时捕获钙离子在植株整体水平以及亚细胞水平的变化,才能深入理解钙信号的重要功能。过去几十年中,人们在钙离子检测与成像技术方面进行了大量探索,本文总结了近年来植物科学研究中常用的钙离子检测与成像技术,着重介绍了化学荧光探针和基于荧光蛋白钙离子探针的原理、特点、浓度计算方法、在细胞质以及细胞器钙离子检测与成像中的应用等,并总结了化学荧光探针的装载方法。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
钙离子成像论文参考文献
[1].刘泽玥,许琪.利用GCaMP6f蛋白对小鼠伏隔核神经元活动的钙离子成像[J].基础医学与临床.2016
[2].胡振妍,赵晓玉,王浩然,林金星,荆艳萍.植物细胞钙离子检测与成像技术研究进展[J].电子显微学报.2016
[3].宋蔚林,赵从健,阴正勤,王一.GCaMP基因工程化的C17.2神经干细胞的钙离子成像研究[J].第叁军医大学学报.2015
[4].陈江旭.腺苷诱导DRG神经元钙离子动态响应的光学检测与显微成像[D].福建师范大学.2014
[5].谷峰,付丽,马勇杰.利用FM成像方法检测突触前膜钙离子通道介导的神经递质释放(英文)[J].NeuroscienceBulletin.2009
[6].方晓峰,赵晓婷,周维,李佳,刘琴.4种钙离子检测/成像系统检测细胞胞浆钙振荡的比较[J].自然科学进展.2008
[7].姚军,棚赖精叁,田村康夫,吉田定宏.大鼠牙釉质形成中钙离子的成像及其信息传递的分析[J].现代口腔医学杂志.2008