导读:本文包含了蛹虫草培养基论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:醇溶蛋白,蛹虫草,液体发酵,氨基酸分析
蛹虫草培养基论文文献综述
杨爽,郑明珠,李晟,肖瑜,曹勇[1]（2019）在《蛹虫草液体发酵玉米醇溶蛋白培养基优化》一文中研究指出试验利用蛹虫草液体发酵的方法改性玉米醇溶蛋白,研究发酵培养基组成对蛋白水解度的影响,得到液体发酵醇溶蛋白的最适培养基,并对液体发酵蛋白水解物的氨基酸组成进行分析。结果表明,在葡萄糖7%、醇溶蛋白6%、VB1 120 mg/100 mL条件下,蛋白水解度为19.02%。液体发酵提高醇溶蛋白的必需氨基酸含量,其中赖氨酸含量达3.90 g/100 g。(本文来源于《食品工业》期刊2019年11期）
施新琴,乔鹏,李化秀,顾寅钰,薄颖颖[2]（2019）在《不同菌株及培养基质对蛹虫草氨基酸组成的影响》一文中研究指出菌株和培养基质是影响蛹虫草产品品质的2个关键因素。选用L3、林3、8-ch和Z2-CH共4个蛹虫草菌株培育蚕蛹虫草,测定各蚕蛹虫草氨基酸组成;同时选择蛹虫草菌株L3,分别接种到家蚕幼虫、柞蚕蛹和灭菌小麦等不同培养基质上,测定所得蛹虫草的氨基酸组成。结果显示,不同蛹虫草菌株对蚕蛹虫草氨基酸种类没有影响,均为17种,但是对蚕蛹虫草的氨基酸总含量、必需氨基酸含量、各氨基酸含量等均存在极显着影响(P<0.01);接种L3菌株的蚕蛹虫草氨基酸总含量最高达398.28 mg/g,7种人体必需氨基酸的总含量也最高,达到98.34 mg/g。接种L3菌株的各种蛹虫草样品中的氨基酸种类均为17种,但各氨基酸含量有所不同,蚕蛹虫草中氨基酸总含量最高(P<0.01),达349.87 mg/g,柞蚕蛹蛹虫草次之,小麦蛹虫草氨基酸总含量最低,为233.64 mg/g;蛹虫草中必需氨基酸含量则以柞蚕蛹蛹虫草最高,蚕蛹虫草次之,小麦蛹虫草最低;另外,蚕蛹虫草中丝氨酸、甘氨酸、丙氨酸和酪氨酸4种氨基酸含量极显着高于其他蛹虫草(P<0.01),其中甘氨酸含量最高,达93.50 mg/g。研究结果表明,不同培养基质及不同菌株对蛹虫草的氨基酸种类没有影响,但对各氨基酸含量及总含量影响较大,接种L3菌株培育的蚕蛹虫草在生产氨基酸制品方面具有较高的应用价值。(本文来源于《蚕业科学》期刊2019年04期）
雷燕妮,张小斌,李多伟,杨梅[3]（2019）在《蛹虫草培养基中多肽的提取分离工艺》一文中研究指出为蛹虫草资源进一步开发利用提供参考,采用双因素试验、单因素试验与正交试验相结合的方法研究蛹虫草培养基多肽提取的最佳生产工艺条件。结果表明:超声法提取蛹虫草培养基多肽优于热回流法;超声法提取最佳工艺为蒸馏水pH 8.5,料液比1∶15,提取时间45min,提取1～2次;该条件下蛹虫草培养基多肽的提取率为21.85%～22.26%。(本文来源于《贵州农业科学》期刊2019年09期）
黄畅[4]（2019）在《基于超声预处理的蛹虫草培养基残基ACE抑制因子制备及其过程原位监测研究》一文中研究指出蛹虫草,相比冬虫夏草,含有虫草素等多种特有的活性物质,近年来人工培育的规模逐渐扩大。蛹虫草培养基残基(Cordyceps militaris medium residues,CMMR)是人工培植的蛹虫草收割子实体后的副产物,其中含有丰富的蛋白质,具有开发包含多肽的血管紧张素转化酶(angiotensin I-converting enzyme,ACE)抑制因子的潜质,但目前缺乏有效的高价值利用方法。本研究在明确CMMR中蛋白质等基本成分特征及其ACE抑制活性的基础上,采用超声预处理酶解法制备CMMR ACE抑制因子,并探究应用近红外光谱技术监测酶解环节酶解产物ACE抑制率的变化规律,为高值、高效、智能化开发应用CMMR制备活性物质提供依据。主要研究内容与结论如下:1.利用CMMR制备ACE抑制因子的技术路径研究。对CMMR的氨基酸组成等基本成分构成进行检测,以探究利用CMMR制备ACE抑制因子的可能性;以ACE抑制率为指标筛选制备ACE抑制因子最佳技术路径。试验结果表明,CMMR含非淀粉多糖2.97%及蛋白质15.83%(含大分子蛋白和小分子多肽),且其疏水性氨基酸及酪氨酸在总蛋白中占比高达31.20%;CMMR的直接提取物及酶解产物均具有ACE抑制活性,优选出制备ACE抑制因子最佳工艺路线为:对CMMR先进行超声预处理,再依次进行淀粉酶酶解和蛋白酶酶解,即可得到高ACE抑制率的功能因子。2.基于超声预处理的CMMR ACE抑制因子制备技术研究。采用多频S型超声波设备,探究不同超声工作模式、超声预处理参数(超声预处理过程中物料浓度、处理液pH值、处理液初始温度、超声预处理时间及超声功率密度)对CMMR的两级酶解(淀粉酶酶解、蛋白酶酶解)产物ACE抑制活性及干物质含量的影响。筛选出最佳工作模式为20/28 kHz顺序双频逆流超声,优选出最佳超声预处理参数为:物料浓度40 g/L、处理液pH值10、处理液初始温度50℃、超声预处理时间30 min、超声功率密度128 W/L。以ACE抑制率为指标,在最优预处理条件下优化两级酶解过程参数,得到最佳酶解条件为:在pH7.5条件下,以淀粉酶酶解15 min;在pH9.5条件下,以蛋白酶酶解40 min。在最优超声预处理及酶解条件下,所得酶解产物抑制ACE活性的IC_(50)值为4.62 mg/mL,酶解产物得率为64.62%,酶解产物中含总多糖64.06%、总蛋白21.13%,多肽含量为19.73%。3.利用CMMR制备ACE抑制因子酶解过程的原位实时监测技术研究。采用近红外光谱技术与化学计量学相结合的方法,建立CMMR制备ACE抑制因子酶解过程的原位实时监测体系。采用浸入式微型光纤近红外光谱设备分别采集淀粉酶酶解过程、蛋白酶酶解过程的光谱信息,利用标准正态变量变换(SNV)方法进行预处理后,通过联合区间(Si)、随机蛙跳(RF)和竞争性自适应加权抽样(CARS)叁种不同的变量筛选方法进行特征变量的筛选,再结合偏最小二乘法(PLS)分别构建淀粉酶酶解过程、蛋白酶酶解过程中样本点酶解产物经两级酶解后的ACE抑制率的定量预测模型。研究结果表明,竞争性自适应加权抽样偏最小二乘法(CARS-PLS)模型预测结果与稳定性最优,其中淀粉酶酶解过程中酶解产物经两级酶解后的ACE抑制率预测模型的Rp=0.9693,RMSEP=0.01,蛋白酶酶解过程中酶解产物的ACE抑制率预测模型的Rp=0.9454,RMSEP=0.03。结果表明基于近红外光谱技术建立CMMR制备ACE抑制因子酶解过程的原位实时监测体系是可行的。(本文来源于《江苏大学》期刊2019-06-01）
孙叶,包建忠,刘红,马辉,张甜[5]（2019）在《蛹虫草培养基多糖的提取及抗肿瘤活性研究》一文中研究指出为综合利用蛹虫草小麦培养基,研究培养基多糖的提取和开发。在热回流水提法和超声波水提法单因素试验的基础上,采用热回流水提法正交试验筛选蛹虫草小麦培养基粗多糖最佳的提取工艺;用MTT法检测了不同处理提纯多糖的抗肿瘤活性。结果表明热回流水提法提取培养基粗多糖效果优于超声波水提法;提取温度100℃、料液比1 g∶25 mL、提取3次、每次提取时间90 min,为最佳培养基粗多糖提取工艺;影响粗多糖提取效率的4个因素的主次关系是:提取温度>提取时间>提取次数>料液比;粗多糖的得率随着醇沉浓度的提高而提高。MTT试验发现质量浓度为5 mg/mL、培养时间72 h,培养基脱脂脱蛋白多糖A对HepG2肝癌细胞抑制率可达到83.02%,培养基脱脂多糖B的抑制率可达到75.39%,培养基未脱脂脱蛋白粗多糖C抑制率为30.61%,提纯多糖表现出较高的抑制率;100℃热回流水提蛹虫草子实体脱脂脱蛋白多糖F,质量浓度为5 mg/mL、培养72 h后,对Hepg2细胞抑制率平均值达到92.974%,与对照顺铂(SB)无显着差异,与多糖A差异显着。(本文来源于《食品与生物技术学报》期刊2019年04期）
李志涛,彭蕊,朱冰清,王晖[6]（2019）在《蛹虫草液体发酵培养基的研究》一文中研究指出以蛹虫草的菌丝体为目的产物,采用L_(18)(3~7)正交试验研究蛹虫草最佳液体菌种培养基配方。试验结果表明,葡萄糖、蛋白胨、磷酸二氢钾、硫酸镁对蛹虫草菌丝体含量有显着影响;最佳配方为:葡萄糖2.5%、玉米粉1.0%、蛋白胨0.5%、磷酸二氢钾0.15%、碳酸钙0.05%、硫酸镁0.10%、维生素B_10.003%,在此条件下的菌丝体含量达24.17 mg/m L。(本文来源于《农业科技与装备》期刊2019年02期）
刘红,马辉,曹宏,李阳鸣,包建忠[7]（2019）在《不同蛹虫草杂粮培养基的生产性能及滋味物质分析》一文中研究指出为提高蛹虫草产量和培养基开发利用效率,配制了10组蛹虫草粗杂粮培养基,比较其培养蛹虫草的子实体生长速度、生产性能及培养基所制杂粮粥的感官评价,从中选出3组综合性状优异的培养基配方,并进一步分析子实体活性物质含量、培养基氨基酸及滋味物质组成。结果表明:筛选出的3组培养基配方分别为燕麦培养基(燕麦仁25 g)、复合培养基6(燕麦仁5 g+糙米5 g+黄豆5 g+莲子10 g)和糙米培养基(糙米25 g),其中燕麦培养基和复合培养基6所培养的蛹虫草子实体生长速度快,生产性能高,所制蛹虫草杂粮粥感官评价较好;糙米培养基所制杂粮粥感官评价最高。叁组培养基含量最多的两种氨基酸分别为脯氨酸、谷氨酸;味道强度值(TAV)最大的均为谷氨酸,达33.65～46.95。培养基有机酸总量最高为燕麦培养基,最低为糙米培养基;燕麦培养基苹果酸、琥珀酸TAV值分别为12.49和19.65,糙米培养基酒石酸TAV值为7.27,培养基6琥珀酸TAV值为30.09,以上对呈味有较大贡献。上述结果表明:用适宜配方的杂粮培养基培养蛹虫草,使子实体产量高,蛹虫草杂粮粥滋味较好,为提高培养基开发利用水平提供了理论依据。(本文来源于《食品工业科技》期刊2019年12期）
孙润生,孙冬梅,张杰,刘云成[8]（2018）在《蛹虫草产虫草素培养基优化》一文中研究指出为了筛选最佳蛹虫草CM-001菌株的培养条件,采用单因素实验和正交设计对蛹虫草菌丝体的液体发酵培养基配方进行优化。结果显示,CM-001菌株产虫草素最适碳源为葡萄糖,最适氮源为蛋白胨、最适无机盐为KH2PO4和ZnSO4·7H2O组合。最适培养基配方为:葡萄糖30 g·L-1,蛋白胨3.5 g·L-1,KH2PO4和ZnSO4·7H2O各2 g·L-1,希望对工业化生产提供技术支持。(本文来源于《黑龙江八一农垦大学学报》期刊2018年05期）
代勇[9]（2018）在《蛹虫草菌丝液体培养基中碳氮源的研究试验》一文中研究指出蛹虫草(Cordceps milharisc(L)Linr)又称北冬虫夏草,属子囊菌纲,肉座菌目,麦角菌科,虫草属。天然虫草资源十分匮乏,半人工栽培生产周期长,技术不易掌握。通过液体深层培养法可获得与天然虫草化学成分相近的菌丝体,还可获得次生代谢产物,还能大大缩短生产周期。所以,通过液体发酵培养虫草菌丝是获得虫草产品的重要手段,现将碳氮源对蛹虫草菌丝生长影响的试验报告如下:1材料和方法(本文来源于《农民致富之友》期刊2018年20期）
田野,李周,钱正明,李文佳,孙敏甜[10]（2018）在《3种不同培养基蛹虫草甾醇类成分比较分析》一文中研究指出目的比较桑蚕蛹虫草、柞蚕蛹虫草和蛹虫草子实体中甾醇类成分的含量。方法采用高效液相色谱(HPLC)联用蒸发光散射检测器(ELSD)法,色谱柱为Agilent SB C_(18)柱(4.6 mm×150 mm,5μm),流动相为水和0.005%甲酸-甲醇溶液,梯度洗脱。结果麦角甾醇的含量依次为蛹虫草子实体>桑蚕蛹虫草>柞蚕蛹虫草;胆甾醇和谷甾醇仅能在桑蚕蛹虫草和柞蚕蛹虫草中被检测到,在蛹虫草子实体中未被检出。结论 3种不同培养基培养的蛹虫草产品中甾醇的种类和含量均存在差异,该研究为不同来源蛹虫草的质量控制、合理用药和综合开发提供了依据。(本文来源于《今日药学》期刊2018年08期）
蛹虫草培养基论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
菌株和培养基质是影响蛹虫草产品品质的2个关键因素。选用L3、林3、8-ch和Z2-CH共4个蛹虫草菌株培育蚕蛹虫草,测定各蚕蛹虫草氨基酸组成;同时选择蛹虫草菌株L3,分别接种到家蚕幼虫、柞蚕蛹和灭菌小麦等不同培养基质上,测定所得蛹虫草的氨基酸组成。结果显示,不同蛹虫草菌株对蚕蛹虫草氨基酸种类没有影响,均为17种,但是对蚕蛹虫草的氨基酸总含量、必需氨基酸含量、各氨基酸含量等均存在极显着影响(P<0.01);接种L3菌株的蚕蛹虫草氨基酸总含量最高达398.28 mg/g,7种人体必需氨基酸的总含量也最高,达到98.34 mg/g。接种L3菌株的各种蛹虫草样品中的氨基酸种类均为17种,但各氨基酸含量有所不同,蚕蛹虫草中氨基酸总含量最高(P<0.01),达349.87 mg/g,柞蚕蛹蛹虫草次之,小麦蛹虫草氨基酸总含量最低,为233.64 mg/g;蛹虫草中必需氨基酸含量则以柞蚕蛹蛹虫草最高,蚕蛹虫草次之,小麦蛹虫草最低;另外,蚕蛹虫草中丝氨酸、甘氨酸、丙氨酸和酪氨酸4种氨基酸含量极显着高于其他蛹虫草(P<0.01),其中甘氨酸含量最高,达93.50 mg/g。研究结果表明,不同培养基质及不同菌株对蛹虫草的氨基酸种类没有影响,但对各氨基酸含量及总含量影响较大,接种L3菌株培育的蚕蛹虫草在生产氨基酸制品方面具有较高的应用价值。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
蛹虫草培养基论文参考文献
[1].杨爽,郑明珠,李晟,肖瑜,曹勇.蛹虫草液体发酵玉米醇溶蛋白培养基优化[J].食品工业.2019
[2].施新琴,乔鹏,李化秀,顾寅钰,薄颖颖.不同菌株及培养基质对蛹虫草氨基酸组成的影响[J].蚕业科学.2019
[3].雷燕妮,张小斌,李多伟,杨梅.蛹虫草培养基中多肽的提取分离工艺[J].贵州农业科学.2019
[4].黄畅.基于超声预处理的蛹虫草培养基残基ACE抑制因子制备及其过程原位监测研究[D].江苏大学.2019
[5].孙叶,包建忠,刘红,马辉,张甜.蛹虫草培养基多糖的提取及抗肿瘤活性研究[J].食品与生物技术学报.2019
[6].李志涛,彭蕊,朱冰清,王晖.蛹虫草液体发酵培养基的研究[J].农业科技与装备.2019
[7].刘红,马辉,曹宏,李阳鸣,包建忠.不同蛹虫草杂粮培养基的生产性能及滋味物质分析[J].食品工业科技.2019
[8].孙润生,孙冬梅,张杰,刘云成.蛹虫草产虫草素培养基优化[J].黑龙江八一农垦大学学报.2018
[9].代勇.蛹虫草菌丝液体培养基中碳氮源的研究试验[J].农民致富之友.2018
[10].田野,李周,钱正明,李文佳,孙敏甜.3种不同培养基蛹虫草甾醇类成分比较分析[J].今日药学.2018