导读:本文包含了副溶血性弧菌论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:弧菌,溶血性,耐药性,致病菌,层析,李斯特,姜黄。
副溶血性弧菌论文文献综述
徐秋芳,卢晓芸,张相猛,施怡茹,高红梅[1]（2020）在《2015-2016年上海市青浦区副溶血性弧菌菌型分布及耐药分析》一文中研究指出目的掌握上海市青浦区近几年副溶血性弧菌的菌型分布和耐药情况。方法搜集2015-2016年两年间副溶血性弧菌,利用血清凝集法分析血清型分布、PCR检测毒力基因分布、大流行株基因和耐药抗性基因的携带情况,采用肉汤稀释法测定副溶血性弧菌MIC值并分析其耐药性。结果在获得的202株菌株血清分型中共16种血清型,以O3群(54. 95%)为主,其次是O4群(38. 12%)。95. 62%(n=457)的菌株携带tdh毒力基因;以tdh+的O3∶K6大流行克隆株为主,携带toxRS new和丝状噬菌体(orf8)基因。副溶血性弧菌主要对头孢唑啉、阿莫西林/克拉维酸和氨苄西林出现较严重耐药情况,耐药基因筛选结果:TEM基因有3株阳性,SHV基因有1株阳性,未发现OXA基因阳性。结论上海市青浦区副溶血性弧菌菌型以O3群为主,尤其tdh+的O3∶K6大流行克隆株,携带toxRS new和orf8基因。目前副溶血性弧菌对美国疾控中心推荐用药处于敏感状态,耐药抗性基因值得关注。(本文来源于《医学动物防制》期刊2020年03期）
丁显香,袁辉,宗俊,潘欢弘,杨梦[2]（2019）在《一起旅行团输入性副溶血性弧菌感染引起腹泻疫情调查》一文中研究指出目的调查1起境外旅游团中发生的感染性腹泻疫情发生的原因和危险因素,提出防控措施,防止类似事件再发。方法对该旅行团所有成员开展调查和采样,对结果进行流行病学分析。结果该旅行团共搜索到确诊病例8例,隐性感染者3例,流行曲线提示点源暴露,临床症状以腹泻、呕吐为主。回顾性队列研究显示青口贝(RR=5.0,95%CI:0.8～31.6)和虾子(RR=+∞),相对危险性较高。8例病例和3位同行者的样品中分离培养出副溶血性弧菌,经脉冲场凝胶电泳(PFGE)分子分型显示11株副溶血性弧菌带型一致,提示同源。结论这是一起疑似食用被副溶血性弧菌污染的海鲜食品引起的腹泻疫情,建议旅行社在旅游者须知中增加健康饮食提示。(本文来源于《预防医学情报杂志》期刊2019年11期）
关文浩,司徒慧媛,房志家,孔海萍,杨丽君[3]（2019）在《湛江地区各市售对虾、牡蛎中副溶血性弧菌污染调查及耐药性分析》一文中研究指出目的调查并分析湛江地区各市售对虾、牡蛎中副溶血性弧菌污染及耐药性,以了解当地主要水产品副溶血性弧菌污染及耐药情况,为疾病防控和临床合理用药提供有益数据。方法参照GB 4789.7—2013副溶血性弧菌检验法分离鉴定副溶血性弧菌,同时用Kirby-Bauer纸片扩散法测定其抗生素敏感性。结果 108份对虾、牡蛎中共检出39份样品存在污染,检出率为36.11%,从中分离得到84株副溶血性弧菌。这些菌对18种抗生素显示出不同程度的耐药性,其中对土霉素和阿莫西林耐药率最高,分别为69.05%和53.57%;超过85%菌株对诺氟沙星、环丙沙星、恩诺沙星3种喹诺酮类抗生素敏感。结论湛江地区对虾、牡蛎副溶血性弧菌污染率较高,存在土霉素等耐药的情况。因此在防治过程中应避免使用土霉素等抗生素。(本文来源于《中国卫生检验杂志》期刊2019年22期）
李玉锋,檀玲,王敬敬,刘海泉,潘迎捷[4]（2019）在《酸性电解水(AEW)比DNaseⅠ更有效地破坏副溶血性弧菌的成熟生物被膜》一文中研究指出生物被膜为各种病原体提供庇护,以便微生物在恶劣的环境中生存,其中细胞外DNA(eDNA)被认为是生物被膜的重要的主要成分。该研究通过监测eDNA、胞外蛋白、胞外多糖和副溶血性弧菌结构参数的变化,研究了DNase I和酸性电解水(AEW)处理对成熟生物被膜的影响。同时,实时荧光定量PCR检测副溶血性弧菌中生物被膜相关基因的表达。结果表明,DNaseⅠ处理的生物被膜呈现的eDNA含量显着低于对照组,细胞外蛋白、胞外多糖、生物体积和生物被膜的平均厚度没有显着变化,这表明单独消除eDNA并没有较好地消除生物被膜;AEW处理的生物被膜后,胞外蛋白质和多糖的含量、生物体积和生物被膜的平均厚度均显着低于DNase I处理组。RT-qPCR结果表明,AEW显着降低了副溶血性弧菌的生物被膜形成相关基因(aphA,opaR,cpsA,cpsQ和cqsR)的表达量。因此,AEW不仅可以破坏副溶血性弧菌的生物被膜结构,导致生物被膜的坍塌,还可以抑制毒力和调节基因的表达以及生物被膜的重组能力。对比两种处理方式,AEW比DNaseⅠ更有效地破坏副溶血性弧菌的成熟生物被膜。(本文来源于《中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集》期刊2019-11-13）
卢奕,赵勇,宋益善,朱永恒,欧杰[5]（2019）在《上海市副溶血性弧菌菌株多样性及耐药性研究》一文中研究指出副溶血性弧菌不仅能引发的食源性腹泻病,同时也是导致虾类早期死亡综合征(EMS)或急性肝胰脏坏死病(AHPND)的病原,给对虾水产养殖造成严重威胁。为了解上海市售水产品中及病虾中分离得到的副溶血性弧菌的耐药情况,通过药敏纸片扩散法(K-B法)对这62株副溶血性弧菌进行25种常用抗生素的药敏实验,并结合多位点序列分析(MLST)评估了所有副溶血性弧菌分离株的潜在毒力因子(tlh,tdh,trh)和遗传多样性。结果显示,所有菌株均对青霉素G和甲硝唑具有抗性;同时发现不同来源的菌株,其耐药谱存在一定程度的差异,菌株多重耐药性与菌株致病因子类型间也存在一定的相关性;MLST结果表明分离到菌株分为为16种不同的序列类型(STs),其中7种是本研究新发现的类群,揭示了分离菌株间的遗传变异和相关性。因此,推测人为活动和环境选择压力可能是将菌株致病力从较弱或者无致病力转化为强致病性的过程中具有决定因素;同时通过分析应进一步加强水产品中细菌耐药性的监测,并采取更有效措施控制细菌耐药性。(本文来源于《中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集》期刊2019-11-13）
檀利军,王敬敬,刘海泉,赵勇[6]（2019）在《副溶血性弧菌耐热性直接溶血素(TDH)的研究进展》一文中研究指出副溶血性弧菌(Vibrio parahaemolyticus)是一种常见的革兰氏阴性嗜盐型海洋细菌,主要分布在世界各地沿海地区的水产品中。副溶血性弧菌可导致水产养殖类疾病,给水产养殖业带来巨大的经济损失;更严重的是,人类如果食用了由副溶血性弧菌污染或者未煮熟的水产品容易引起炎症性腹泻等。副溶血性弧菌的致病性取决于它能产生多种毒力因子,而耐热性直接溶血素(Thermostable direct hemolysin,TDH)是副溶血性弧菌最为重要的毒力因子之一,它是一种能够溶解红细胞膜并释放血红蛋白的外毒素,可以说是致病性弧菌中分布最为广泛的毒素。本文就副溶血性弧菌TDH的基因与蛋白结构、表达调控及其影响因素、生物活性与转移分布等近年来最新的研究进展进行综述,旨在进一步了解副溶血性弧菌TDH的特点和感染的病症,为降低由副溶血性弧菌导致的水产养殖类疾病的风险和临床治疗副溶血性弧菌的感染提供理论依据。(本文来源于《中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集》期刊2019-11-13）
陈博文,黄嘉明,李慧慧,王敬敬,刘海泉[7]（2019）在《基于姜黄素对副溶血性弧菌的光动力灭活研究》一文中研究指出副溶血性弧菌(Vibrio parahaemolyticits)作为一种常见的食源性致病菌,其引起的食物中毒事件在世界各地频繁发生,且已被视为全球范围内腹泻类疾病暴发的主要原因之一。光动力灭活(PDI)技术是一种有效的灭菌技术并将成为食品安全的新技术。本研究的目的是通过扫描电子显微镜、琼脂糖凝胶电泳、十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳以及实时荧光定量PCR方法,阐述姜黄素对副溶血性弧菌的光动力灭活引起的杀菌作用。姜黄素与蓝光LED结合作用可显着抑制副溶血性弧菌的生长。在0.8μmol/L姜黄素存在下使用蓝色LED照射5 min后,副溶血性弧菌的灭活率达到99.9999%,表现出形态变化、细胞质渗漏、蛋白质和DNA降解以及毒力基因(tdh,trh和toxR)表达量的下调。本研究表明了姜黄素的光动力灭活作用可能是一种新型的好方法,对副溶血性弧菌的灭活有显着的作用。(本文来源于《中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集》期刊2019-11-13）
陈萍,王敬敬,洪斌,檀玲,张昭寰[8]（2019）在《副溶血性弧菌和单增李斯特菌共培养的混合生物膜的特性》一文中研究指出目前,大多数关于生物膜的研究是采用简化模型广泛研究单种生物膜。然而,混合物种生物膜是主要的生活方式,物种间的相互作用可以决定生物膜群落的发育,结构和功能。在本研究中,研究了由副溶血性弧菌和单增李斯特菌的单种和混合种生物膜。通过结晶紫染色(CV)以研究单种和混合种生物膜的生物膜形成能力。共聚焦激光扫描显微镜(CLSM)联合荧光原位杂交(FISH),以检测细胞的生物膜结构和空间占置。绝对定量PCR(qPCR)用于定量生物膜中每个物种的细胞数量。同时,采用拉曼光谱法分析细胞外聚合物(EPS)的化学变化。结果表明,由副溶血性弧菌和单增李斯特菌的混合物种生物膜明显少于任一单种生物膜。在混合生物膜中,副溶血性弧菌在混合生物被膜中具有显着的竞争优势,其活菌数比单增李斯特菌多约100倍。与单种生物膜相比,混合物种生物膜中的胞外多糖和蛋白质减少,导致粘附性降低,这可以解释为什么混合生物膜中的固着细胞总量减少的原因。本研究可为更复杂的多物种微生物生物被膜模型的研究提供理论基础。(本文来源于《中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集》期刊2019-11-13）
后来旺,郜蓉,高茂桉,陈金玉,蓝蔚青[9]（2019）在《副溶血性弧菌RAA-LF快速检测方法的建立》一文中研究指出副溶血性弧菌(Vibrio parahaemolyticus,VP)是一种嗜盐性革兰氏阴性弧菌,广泛分布在海洋和河口环境,因食用生的或未煮熟的水产品引起人类肠胃炎。近年来,有关副溶血性弧菌的特异基因tdh、tlh、gyrB均被报道,但有国外研究人员发现靶向toxR基因的检测有更高的特异性和灵敏度。本研究根据副溶血性弧菌toxR基因设计筛选基于重组酶等温扩增技术(RAA)的特异性引物,并结合试纸条对其反应条件进行优化。结果表明,RAA-LF在引物浓度为100 nM、30～40℃较宽的温度范围反应20 min即可通过试纸条视觉化观察到结果。通过与常规PCR比较,本试验建立的RAA-LF方法灵敏度(10 fg·μL～(-1))较PCR(100 fg·μL～(-1))方法高出十个数量级。采用五株副溶血性弧菌菌株与其他十株病原菌进行特异性分析发现没有交叉反应,特异性良好。本研究建立的RAA技术结合侧流层析试纸条(LF)端点检测方法,为现场或低资源环境中检测副溶血性弧菌提供了一种简便、快速、特异、灵敏的方法。(本文来源于《中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集》期刊2019-11-13）
王尔群,舒玉聪,宋志琴,秦超,易江源[10]（2019）在《一起副溶血性弧菌食物中毒实验室检测分析》一文中研究指出目的分析一起由副溶血性弧菌引起的食物中毒事件的致病因素,查找来源,为预防控制疫情提供科学依据,积累应急处置经验。方法采用GB 4789.7—2013《食品安全国家标准食品微生物学检验副溶血性弧菌检验》、WS 271—2007《感染性腹泻诊断标准》方法,对食物中毒的样本(患者大便/肛拭29份,厨师肛拭5份,食品及环境样本23份)进行病原菌分离,对分离的病原菌进行血清学分型鉴定,运用荧光定量PCR进行tdh、trh毒力基因检测,脉冲场凝胶电泳技术进行同源性分析。结果从57份标本中分离到29株副溶血性弧菌,27株血清型为O4:KUT型,2株副溶血性弧菌的血清型为O1:KUT。PFGE聚类分析显示,指纹图谱按100%相似度,可分为3种PFGE带型(P1、P2、P3),P1和P2带型之间相似性较强,为94%～96%,P3与P1和P2带型之间的相似性都较差,<70%。毒力基因检测,P1和P2型(27株)tdh+/trh-,P3型tdh-/trh-,tdh携带率为93.10%。结论此起食物中毒主要为O4群携带有tdh毒力基因的多种不同型别副溶血性弧菌引起,污染源主要来自鱼。(本文来源于《中国卫生检验杂志》期刊2019年21期）
副溶血性弧菌论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
目的调查1起境外旅游团中发生的感染性腹泻疫情发生的原因和危险因素,提出防控措施,防止类似事件再发。方法对该旅行团所有成员开展调查和采样,对结果进行流行病学分析。结果该旅行团共搜索到确诊病例8例,隐性感染者3例,流行曲线提示点源暴露,临床症状以腹泻、呕吐为主。回顾性队列研究显示青口贝(RR=5.0,95%CI:0.8～31.6)和虾子(RR=+∞),相对危险性较高。8例病例和3位同行者的样品中分离培养出副溶血性弧菌,经脉冲场凝胶电泳(PFGE)分子分型显示11株副溶血性弧菌带型一致,提示同源。结论这是一起疑似食用被副溶血性弧菌污染的海鲜食品引起的腹泻疫情,建议旅行社在旅游者须知中增加健康饮食提示。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
副溶血性弧菌论文参考文献
[1].徐秋芳,卢晓芸,张相猛,施怡茹,高红梅.2015-2016年上海市青浦区副溶血性弧菌菌型分布及耐药分析[J].医学动物防制.2020
[2].丁显香,袁辉,宗俊,潘欢弘,杨梦.一起旅行团输入性副溶血性弧菌感染引起腹泻疫情调查[J].预防医学情报杂志.2019
[3].关文浩,司徒慧媛,房志家,孔海萍,杨丽君.湛江地区各市售对虾、牡蛎中副溶血性弧菌污染调查及耐药性分析[J].中国卫生检验杂志.2019
[4].李玉锋,檀玲,王敬敬,刘海泉,潘迎捷.酸性电解水(AEW)比DNaseⅠ更有效地破坏副溶血性弧菌的成熟生物被膜[C].中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集.2019
[5].卢奕,赵勇,宋益善,朱永恒,欧杰.上海市副溶血性弧菌菌株多样性及耐药性研究[C].中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集.2019
[6].檀利军,王敬敬,刘海泉,赵勇.副溶血性弧菌耐热性直接溶血素(TDH)的研究进展[C].中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集.2019
[7].陈博文,黄嘉明,李慧慧,王敬敬,刘海泉.基于姜黄素对副溶血性弧菌的光动力灭活研究[C].中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集.2019
[8].陈萍,王敬敬,洪斌,檀玲,张昭寰.副溶血性弧菌和单增李斯特菌共培养的混合生物膜的特性[C].中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集.2019
[9].后来旺,郜蓉,高茂桉,陈金玉,蓝蔚青.副溶血性弧菌RAA-LF快速检测方法的建立[C].中国食品科学技术学会第十六届年会暨第十届中美食品业高层论坛论文摘要集.2019
[10].王尔群,舒玉聪,宋志琴,秦超,易江源.一起副溶血性弧菌食物中毒实验室检测分析[J].中国卫生检验杂志.2019
论文知识图
