USP49通过去泛素化MITA负调控抗病毒天然免疫反应的机制研究

USP49通过去泛素化MITA负调控抗病毒天然免疫反应的机制研究

论文摘要

病毒感染与复制中产生的病原相关分子模式(PAMPs),如RNA、DNA、RNADNA杂合体可以被模式识别受体(PRRs)识别,随后模式识别受体发生构象变化,招募接头蛋白或催化第二信使招募并激活接头蛋白,进而诱导发生一系列信号级联反应,最终介导信号转导与抗病毒天然免疫应答。有研究显示,胞浆中的DNA可以被cGAS识别,cGAS催化ATP和GTP产生cGAMP,cGAMP继而与MITA相结合并激活MITA,从而激活下游信号通路产生I型干扰素和炎症因子。MITA敲除小鼠对HSV-1感染更加敏感,在MITA敲除小鼠的细胞中,HSV-1感染或转染dsDNA后,IRF3的磷酸化以及下游基因的表达几乎完全受到抑制,这些实验说明MITA是介导胞内DNA信号转导的关键蛋白,在抗病毒天然免疫信号通路中发挥着关键的作用。MITA的功能受到各种翻译后修饰的调控,其中包括泛素化和去泛素化修饰。近年来,大量研究报道了E3泛素连接酶在MITA介导的信号通路中发挥的作用及机制。然而,到目前为止,我们对MITA的去泛素化过程、相关的功能与机制尚不完全清楚。为了进一步了解去泛素化作用对MITA调控的信号通路的影响,我们筛选了与MITA存在潜在相互作用的去泛素化酶,结果显示USP49与MITA存在相互作用,并且,两者的相互作用受HSV-1、dsDNA或cGAMP的诱导。在THP-1细胞中敲低或敲除USP49可以促进MITA介导的信号通路的激活。Usp49敲除小鼠的细胞受HSV-1、dsDNA或cGAMP诱导产生的I型干扰素和炎症因子的表达显著升高,病毒复制的强度显著降低,Usp49敲除小鼠对HSV-1的感染更加抵抗。机制研究结果表明,在HSV-1感染之后,USP49能够特异性去除MITA上K63-连接的泛素链修饰,抑制MITA的寡聚化,进而抑制MITA对下游激酶TBK1的招募以及抗病毒天然免应答。以上研究揭示了USP49在抗病毒天然免疫应答中发挥的重要作用,并且为研究MITA介导的信号通路的调控机制提供了新的思路。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第1章 研究背景
  •   1.1 抗病毒天然免疫
  •     1.1.1 模式识别受体
  •       1.1.1.1 Toll样受体(TLRs)调控的信号通路
  •       1.1.1.2 RIG-I样受体(RLRs)调控的信号通路
  •       1.1.1.3 胞浆DNA受体调控的信号通路
  •     1.1.2 转录因子IRF3、NF-的激活以及对I型干扰素的调控
  •   1.2 MITA的功能与调控机制
  •     1.2.1 MITA在天然免疫中发挥免疫防御作用
  •     1.2.2 MITA过度激活造成自身免疫疾病
  •     1.2.3 MITA在抗肿瘤过程中发挥免疫作用
  •     1.2.4 MITA的翻译后修饰
  •   1.3 泛素化修饰在病理生理中的功能
  •     1.3.1 泛素化概述
  •     1.3.2 去泛素化酶概述
  •       1.3.2.1 泛素C端水解酶(UCHs)家族
  •       1.3.2.2 泛素特异性加工酶(USPs)家族
  •       1.3.2.3 卵巢肿瘤相关蛋白酶(OTU)家族
  •       1.3.2.4 Machado-Josephin蛋白酶(MJD)家族
  •       1.3.2.5 JAB1/MPN/Mov34蛋白酶(JAMM)家族
  •     1.3.3 PRRs的泛素化与去泛素化修饰
  •     1.3.4 接头蛋白的泛素化与去泛素化修饰
  •   1.4 去泛素化酶USP49 的结构与功能概述
  • 第2章 实验材料与实验方法
  •   2.1 实验材料
  •     2.1.1 抗体与试剂
  •     2.1.2 细胞与细胞培养
  •     2.1.3 小鼠饲养
  •   2.2 实验方法
  •     2.2.1 质粒构建
  •     2.2.2 双荧光素酶报告基因实验
  •     2.2.3 shRNA相关
  •     2.2.4 RT-PCR实验和ELISA实验
  •     2.2.5 慢病毒感染建立细胞系
  •     2.2.6 小鼠感染实验
  •     2.2.7 Knock out细胞系的建立
  •       2.2.7.1 构建CRISPR载体
  •       2.2.7.2 转染THP-1细胞
  •     2.2.8 小鼠肺成纤维细胞的制备
  •     2.2.9 小鼠巨噬细胞(BMDM)和树突状细胞(BMDC)的分化与培养..
  •     2.2.10 蛋白质免疫印迹与免疫共沉淀实验
  •       2.2.10.1 蛋白质免疫印迹
  •       2.2.10.2 免疫共沉淀
  •     2.2.11 蛋白纯化和GST pull down实验
  •     2.2.12 基因敲除小鼠的鉴定
  •     2.2.13 蛋白纯化和GST pull down实验
  •     2.2.14 非变性聚丙烯酰氨凝胶电泳
  •     2.2.15 Digitonin渗透法转染cGAMP
  •     2.2.16 空斑实验
  •     2.2.17 磷酸钙转染以及Lipofectamine2000转染
  •     2.2.18 流式细胞术
  • 第3章 研究结果与讨论
  •   3.1 研究背景与立项依据
  •   3.2 USP49与MITA的相互作用
  •   3.3 USP49参与调控MITA介导的信号通路
  •   3.4 在人源细胞中敲除USP49促进HSV-1诱导的信号通路的激活
  •   3.5 Usp49基因敲除小鼠的制备与检测
  •   3.6 在小鼠细胞中敲除Usp49促进DNA病毒诱导的信号通路的激活
  •   3.7 在小鼠细胞中敲除Usp49对SeV诱导的信号通路没有影响
  •   3.8 Usp49敲除小鼠对HSV-1 的抵抗力更强
  •   3.9 USP49依赖其去泛素化酶活性抑制MITA介导的信号通路
  •   3.10 USP49依赖其去泛素化酶活性去除MITA上K63-连接的泛素
  •   3.11 USP49抑制MITA的寡聚化,抑制TBK1与MITA的相互作用
  •   3.12 总结
  • 第4章 讨论与展望
  • 参考文献
  • 缩略词表
  • 硕士期间发表的科研成果目录
  • 致谢
  • 文章来源

    类型: 硕士论文

    作者: 叶莉亚

    导师: 钟波,林丹丹

    关键词: 抗病毒天然免疫,泛素化

    来源: 武汉大学

    年度: 2019

    分类: 基础科学

    专业: 生物学

    单位: 武汉大学

    分类号: Q939.91

    总页数: 66

    文件大小: 2155K

    下载量: 31

    相关论文文献

    • [1].蛋白磷酸酶在抗病毒天然免疫应答中的调控作用[J]. 第二军医大学学报 2017(06)
    • [2].我国科学家揭示抗病毒天然免疫新机制[J]. 生物学通报 2016(07)
    • [3].中科院研究鱼类抗病毒天然免疫获进展[J]. 水产养殖 2012(01)
    • [4].细胞抗病毒天然免疫研究有新成果[J]. 山东中医药大学学报 2009(02)
    • [5].抗病毒天然免疫信号转导关键接头蛋白的发现[J]. 科学观察 2009(05)
    • [6].中科院水生所揭示鱼类调控抗病毒天然免疫反应的机制[J]. 水产科技情报 2020(05)
    • [7].长链非编码RNA——抗病毒天然免疫应答的新兴调控因子[J]. 遗传 2018(07)
    • [8].抗病毒天然免疫、炎症与癌变机制[J]. 中国基础科学 2018(01)
    • [9].动物关键模式识别受体及其抗病毒天然免疫作用研究进展[J]. 生命科学 2011(01)
    • [10].人类冠状病毒调节宿主抗病毒天然免疫分子机制[J]. 生物化学与生物物理进展 2010(03)
    • [11].长链非编码RNA在调控抗病毒天然免疫应答中的研究进展[J]. 病毒学报 2019(04)
    • [12].RIG-I在肿瘤发生发展中的作用[J]. 中国肿瘤生物治疗杂志 2018(07)
    • [13].miR-132通过抑制转录共激活因子p300的活性调节抗病毒天然免疫应答[J]. 微生物与感染 2010(02)
    • [14].我国科学家填补病毒核酸信号传导研究一项空白[J]. 中国科技产业 2009(04)
    • [15].鱼类miRNAs及其在抗病毒天然免疫中的作用研究进展[J]. 中国预防兽医学报 2016(09)
    • [16].TRIM25在抗病毒天然免疫及恶性肿瘤发生发展中作用的研究进展[J]. 生命科学 2020(04)
    • [17].禽类抗病毒天然免疫研究取得新进展[J]. 农业科技与信息 2019(05)
    • [18].Toll样受体介导的抗病毒天然免疫[J]. 细胞与分子免疫学杂志 2008(05)
    • [19].LGP2参与抗病毒天然免疫应答的研究进展[J]. 病毒学报 2019(02)
    • [20].王晓健教授团队研究成果揭示天然抗病毒免疫调控新机制[J]. 浙江大学学报(医学版) 2018(04)
    • [21].猪流行性腹泻病毒(PEDV)与抗病毒天然免疫[J]. 中国生物化学与分子生物学报 2011(06)
    • [22].抗病毒天然免疫反应中RIG-Ⅰ样受体调控机制新进展[J]. 军事医学科学院院刊 2010(01)
    • [23].Ring-Box 1基因负调控抗病毒天然免疫的初步研究[J]. 传染病信息 2017(02)
    • [24].EV71的感染和抗病毒天然免疫应答[J]. 病毒学报 2016(04)
    • [25].泛素化调控抗病毒天然免疫的研究进展[J]. 中国科学:生命科学 2018(11)
    • [26].TLR2和TLR4在抗病毒天然免疫应答中的新作用[J]. 病毒学报 2018(04)
    • [27].MAVS介导的抗病毒天然免疫信号通路的调控[J]. 中国动物传染病学报 2018(01)
    • [28].我国科学家发现天然免疫识别与调控新机制[J]. 黑龙江科学 2013(08)
    • [29].NRF1抑制RNA病毒诱导的抗病毒天然免疫反应[J]. 复旦学报(自然科学版) 2019(04)
    • [30].抗病毒天然免疫识别受体的研究进展[J]. 中外医疗 2010(34)

    标签:;  ;  

    USP49通过去泛素化MITA负调控抗病毒天然免疫反应的机制研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢